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负载口蹄疫病毒VP1抗原的树突状细胞启动的T细胞应答
作 者: 张雷
导 师: 王家鑫
学 校: 河北农业大学
专 业: 微生物与生化药学
关键词: 口蹄疫病毒 VP1 原核表达 树突状细胞 T淋巴细胞
分类号: S852.65
类 型: 硕士论文
年 份: 2011年
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内容摘要
口蹄疫(foot-and-mouth disease, FMD)是由口蹄疫病毒(FMD virus, FMDV)引起的偶蹄动物的一种急性、高度接触性、发热性传染病。FMDV衣壳由4种结构蛋白VP1,VP2, VP3, VP4各60个拷贝组成。研究表明,结构蛋白VP1富含T细胞抗原表位与B细胞抗原表位,是诱导产生中和抗体的主要成分,同时还是被宿主细胞识别的主要病原体相关模式分子,在免疫应答中发挥着主要作用。树突状细胞(dendritic cells,DCs)是功能最强大的专职抗原提呈细胞(antigen presenting cell, APC),通过其吞噬受体或模式识别受体捕获抗原,并将其提呈给T细胞,它能够调节机体对病原体的免疫应答,但目前还不清楚它在抗FMDV感染中的作用。实验证明,FMDV野毒株并不感染DC,但在培养基上驯化的FMDV则可以感染DC,并且与抗体结合后的FMDV也可感染DC,导致其抗原提呈功能丧失,而当DC负载灭活FMDV免疫复合物后却能够有效地刺激T细胞。众所周知,细胞免疫应答在抗病毒感染过程中发挥重要作用。被DC活化的T细胞在IL-12的作用下,可分化为Th1细胞,介导细胞免疫应答并产生调理性抗体(IgG),从而清除胞内病原体感染。而在IL-4的作用下,有利于Th细胞向Th2细胞分化,介导体液免疫应答,产生中和抗体,清除外周循环中的病原体。目前尚不清楚DC启动细胞免疫应答的机制。本研究选用VP1进行原核表达,用纯化后的VP1负载DC,再与淋巴结T细胞进行共培养,通过ELISA检测共培养物上清中IFN-y和IL-4的水平,从而研究其免疫应答机制以及DC提呈FMDVVP1抗原的途径。试验以重组质粒pUC57-VP1为模板,经过Nco I-HF和Xho I双酶切得到FMDV的VP1基因,再以相同的限制性酶对原核表达载体pET32a(+)进行消化,通过T4 DNA连接酶连接二者,并将连接产物转化到宿主菌DH5a中去,得到重组质粒pET32a(+)-VP1,再将新得到的重组质粒pET32a(+)-VP1转化到宿主菌BL21(DE3)中去,经酶切鉴定以及基因序列测定。结果表明,VP1基因定向连接到原核表达载体pET32a(+)上。将VP1基因与GenBank发表的序列进行同源性比较,证明本研究所用的基因序列与Foot-and-mouth disease virus O isolate O/NYOO基因编码序列(NCBI登陆号为AY333431.1)同源性最高,可达100%。结果证明pET32a(+)-VP1重组表达菌构建成功。为鉴定pET32a(+)-VP1基因能否在大肠杆菌中进行表达,研究者对重组表达菌进行诱导表达,同时以相同的条件对空载体pET32a(+)进行诱导表达,用来作为阴性对照。SDS-PAGE电泳以及Western-blotting检测结果显示,在分子量约为43kDa处有一条明显的蛋白条带,而空载体pET32a(+)在相应的位置却未见此特异性蛋白条带。为了验证负载FMDV VP1的DC能否有效地激活淋巴结T细胞,用负载FMDVVP1的DC与淋巴结T细胞组成共培养体系,同时以DC与淋巴结T细胞共培养体系作为阴性对照,以DC作为空对照,通过ELISA检测不同时间点上清液中IFN-y和IL-4的水平。结果显示,负载FMDV VP1的DC能够有效地激活淋巴结T细胞。该结果为进一步研究DC提呈FMDVVP1的机制和新型疫苗的研制奠定了重要基础。
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全文目录
摘要 4-5 Abstract 5-7 缩略词索引表 7-11 1 引言 11-22 1.1 口蹄疫的研究进展 11-14 1.1.1 FMDV的生物学特性 12-13 1.1.2 FMD的流行病学 13 1.1.3 FMDV的感染机制 13-14 1.2 树突状细胞的研究进展 14-18 1.2.1 DC的起源和分类 14-15 1.2.2 DC的生物学特性 15 1.2.3 DC的抗原提呈途径 15-17 1.2.4 DC与FMDV的关系 17-18 1.3 T细胞介导的细胞免疫应答 18-19 1.3.1 CD4~+T细胞介导的免疫应答 18 1.3.2 CD8~+T细胞介导的免疫应答 18-19 1.3.3 细胞免疫应答的基本过程 19 1.4 T细胞应答的生物学作用 19-20 1.5 本研究的目的和意义 20-22 2 实验材料、仪器及试剂 22-29 2.1 菌株、载体和细胞 22 2.2 主要实验材料 22-23 2.3 主要仪器设备 23 2.4 主要试剂配制 23-29 3. 实验方法 29-42 3.1 重组质粒pET32a(+)-VP1的构建 29-33 3.1.1 重组质粒pUC57-VP1的小量制备 29-30 3.1.2 重组质粒pUC57-VP1的酶切鉴定 30 3.1.3 目的基因VP1的回收 30-31 3.1.4 原核表达载体pET32a(+)的制备 31 3.1.5 原核表达载体pET32a(+)质粒的酶切鉴定 31 3.1.6 目的基因pET32a(+)的回收 31 3.1.7 VP1与pET32a(+)的定向连接 31-32 3.1.8 连接产物转化感受态细胞DH5a 32-33 3.1.9 重组质粒的酶切鉴定 33 3.2 重组质粒pET32a(+)-VP1的DNA序列测定 33 3.3 重组质粒pET32a(+)-VP1转化感受态细胞BL21(DE3) 33-34 3.3.1 重组质粒pET32a(+)-VP1和pET32a(+)质粒转化感受态细胞BL21(DE3) 33 3.3.2 转化质粒pET32a(+)-VP1和pET32a(+)的酶切鉴定 33-34 3.4 转化BL21(DE3)的重组质粒pET32a(+)-VP1的DNA序列测定 34 3.5 重组菌pET32a(+)-VP1的诱导表达 34-35 3.5.1 重组表达菌的诱导表达 34 3.5.2 重组蛋白最佳诱导表达条件的确定 34-35 3.5.3 表达蛋白的可溶性检测 35 3.6 重组蛋白的纯化回收 35-38 3.6.1 包涵体的分离 35 3.6.2 包涵体的洗涤 35-36 3.6.3 包涵体的溶解 36 3.6.4 包涵体的梯度透析复性 36 3.6.5 SDS-PAGE 36-37 3.6.6 电洗脱以及蛋白质的浓缩 37-38 3.6.7 蛋白质浓度的测定及保存 38 3.7 重组蛋白的western blot鉴定 38 3.8 实验动物 38-39 3.9 细胞培养 39-40 3.9.1 骨髓源树突状细胞的制备 39 3.9.2 小鼠淋巴结T细胞的制备 39-40 3.10 负载FMDV VP1的DC激活淋巴结T细胞的检测 40-41 3.10.1 负载VP1的BMDC与淋巴结T细胞共培养 40 3.10.2 共培养上清中IFN-γ和IL-4的检测 40-41 3.11 统计学分析 41-42 4 结果 42-55 4.1 重组质粒pUC57-VP1的酶切鉴定 42 4.2 重组质粒pET32a(+)-VP1的构建 42-43 4.3 重组质粒pET32a(+)-VP1的序列测定 43-44 4.4 重组表达质粒pET32a(+)-VP1的测序鉴定结果 44 4.5 重组表达菌的诱导表达和SDS-PAGE分析 44-45 4.6 重组蛋白最佳诱导条件的确定 45-47 4.6.1 最佳诱导时间的确定 45 4.6.2 最佳诱导温度的确定 45-46 4.6.3 最佳诱导剂浓度的确定 46-47 4.7 重组蛋白的超声波裂解 47-48 4.8 重组蛋白的纯化及浓度测定 48-49 4.8.1 蛋白质的纯化 48-49 4.8.2 蛋白质浓度的测定 49 4.9 重组蛋白的western blot鉴定 49-50 4.10 BMDC体外培养生长情况 50-51 4.11 负载FMDV VP1的BMDC激活T细胞表达IFN-γ和IL-4的检测 51-55 5 讨论 55-61 5.1 重组菌pET32a(+)-VP1在大肠杆菌中的诱导表达 55-56 5.2 重组蛋白包涵体的纯化 56-59 5.2.1 包涵体的分离 57 5.2.2 包涵体的洗涤与溶解 57-58 5.2.3 包涵体的复性 58-59 5.3 负载FMDV VP1的DC激活淋巴结T细胞的研究 59-61 6 结论 61-62 参考文献 62-69 附图及说明 69-71 在读期间发表的学术论文 71-73 作者简历 73-74 致谢 74
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中图分类: > 农业科学 > 畜牧、动物医学、狩猎、蚕、蜂 > 动物医学(兽医学) > 兽医基础科学 > 家畜微生物学(兽医病原微生物学) > 家畜病毒学
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