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人类杯状病毒的pET-28a(+)-SVA构建及高效表达和LAMP法检测
作 者: 陈宗峰
导 师: 黄祖新
学 校: 福建师范大学
专 业: 生物化学与分子生物学
关键词: 人类杯状病毒 诺如病毒 札如病毒 克隆 衣壳蛋白表达 环介导等温扩增
分类号: R373
类 型: 硕士论文
年 份: 2009年
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内容摘要
人类杯状病毒(Human caliciviruses,HucV)包括诺如病毒属(NV)和札如病毒属(SV),是导致胃肠炎和病毒性腹泻的重要病毒之一。目前分离和研究较多的是NV,而SV国内基础研究资料的匮乏,给病毒的检测和疫苗的研制带来了很多困难。本课题研究工作的目的在于:构建SV原核表达载体,并以此为代表表达人类杯状病毒衣壳蛋白,同时建立环介导等温扩增技术检测方法。对认识病毒感染的本质,快速诊断,研制疫苗以及抗病毒药物提供重要的基础资料,对了解婴幼儿腹泻的发病机制及疾病的预防具有重大的指导意义。本课题包括两个部分:一是对人类杯状病毒衣壳基因序列进行人工合成、然后克隆构建原核表达载体,并表达。二是建立环介导等温扩增技术检测人类杯状病毒的方法。一、设计引物,人工合成SV衣壳基因,TA克隆后测定其核苷酸序列。将其定向克隆入pET-28a(+)载体,构建新的原核表达载体,经菌落PCR和酶切鉴定正确后,转化至大肠杆菌BL21(DE3)。通过适当的培养基组成、接种量、诱导OD值、IPTG浓度和诱导时间等因素表达SV衣壳蛋白。最后,收集菌体,破菌,离心,分离上清和包涵体。SDS-PAGE显示,目的蛋白主要以包涵体形式存在。Western-blotting结果显示,SV蛋白能够特意地与六组氨酸抗体发生免疫反应,在15kd处有一条明显的条带。二、环介导等温扩增(简称LAMP)是利用4个特殊设计的引物和具有链置换活性的DNA聚合酶,在恒温条件下特异、高效、快速地扩增DNA的新技术,电泳后在凝胶上显现出由不同大小的区带组成的阶梯式图谱。本实验建立了环介导等温扩增技术(LAMP)快速检测人类杯状病毒的方法,该方法与传统PCR方法相比,LAMP方法具有灵敏度高,特异性强,操作简便快速,不需要复杂仪器设备等优点,为临床检测腹泻病毒快速简便的新方法。
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全文目录
中文摘要 2-3 Abstract 3-5 中文文摘 5-8 目录 8-12 绪论 12-26 第一节 人类杯状病毒研究现状及意义 12-16 1.人类杯状病毒的分类和命名 12 2.人类杯状病毒的分子生物学特征 12-13 3.人类杯状病毒分子流行病学研究概况 13-14 4.人类杯状病毒的疫苗研究现状 14-15 5.人类杯状病毒的检测方法 15-16 5.1 经典检测技术 15 5.2 酶联免疫吸附检测技术 15-16 5.3 基因检测技术 16 第二节 环介导等温扩增技术(LAMP) 16-23 1.环介导等温扩增技术简介 16-17 2.LAMP反应引物设计 17-18 3.LAMP反应原理 18-21 4.LAMP反应特点 21-22 5.LAMP技术的应用 22-23 5.1 对DNA病毒的检测 22 5.2 对RNA病毒的检测 22-23 5.3 对细菌的检测 23 5.4 对真菌的检测 23 第三节 课题研究的意义及前景 23-26 第一章 札如病毒的pET-28a(+)-SVA的构建 26-44 第一节 前言 26 第二节 材料与方法 26-37 1.材料 26-28 1.1 载体和菌株 26 1.2 人工合成SVA基因序列的引物 26-27 1.3 培养基 27 1.4 主要仪器与试剂 27-28 2.方法 28-37 2.1 SV氨基酸序列的选取及碱基序列的翻译 28-30 2.2 人工合成SVA基因序列的模板反应体系 30-31 2.3 人工合成SVA基因序列的模板反应条件 31-32 2.4 SVA的PCR产物加A尾: 32 2.5 SVA基因片段的TA克隆 32-33 2.6 质粒抽提 33-34 2.7 分别酶切pMD19-T-SVA和pET28a(+) 34 2.8 DNA片段的凝胶回收 34-35 2.9 SVA目的片段与pET28a(+)载体的连接及pET28a(+)-SVA的转化 35 2.10 重组质粒pET28a(+)-SVA的筛选 35-36 2.11 植菌和提质粒酶切鉴定 36 2.12 重组质粒pET28a(+)-SVA的转化及鉴定 36-37 第三节 结果与讨论 37-42 1.pET28a(+)-SVA载体构建原理(见图1-1): 37-38 2.人工合成SVA基因序列 38 3.SVA基因序列的PCR扩增 38-39 4.SVA基因片段PCR扩增产物琼脂糖凝胶电泳 39 5.SVA基因片段的TA克隆和克隆质粒测序 39-40 6.酶切pET28a(+)和克隆质粒pMD19-T-SVA 40 7.表达质粒pET28a(+)和SVA基因片段的连接和转化 40 8.重组表达质粒的菌落PCR及酶切鉴定 40-41 8.1 重组表达质粒的菌落PCR鉴定 40-41 8.2 重组表达质粒的酶切鉴定 41 9.重组表达质粒测序及分析 41-42 第四节 结论 42-44 第二章 SVA基因蛋白的表达和鉴定 44-54 第一节 前言 44 第二节 材料与方法 44-49 1 材料 44-45 1.1 菌种 44 1.2 培养基 44 1.3 主要仪器与试剂 44-45 1.4 配制液 45 2 方法 45-49 2.1 表达菌株的筛选和目的蛋白的诱导表达 45-46 2.2 SDS-PAGE电泳 46-48 2.3 考马斯亮蓝染色 48 2.4 Western blotting 48 2.5 抗体反应及显色反应 48-49 第三节 结果与讨论 49-51 1.SVA基因片段的诱导表达 49 1.1 筛选表达菌株 49 1.2 诱导表达 49 2.SVA蛋白的SDS-PAGE电泳检测 49-50 3.Western blotting 50-51 第四节 结论 51-54 第三章 环介导等温扩增(LAMP)检测人类杯状病毒 54-78 第一节 前言 54 第二节 材料与方法 54-66 1.材料 54-57 1.1 试剂 54 1.2 样本 54-55 1.3 引物 55-57 2.方法 57-66 2.1 病毒RNA抽提 57-58 2.2 病毒RNA反转录反应 58 2.3 引物设计 58-59 2.4 LAMP扩增反应条件及优化 59 2.5 LAMP反应的特异性的判断 59-60 2.6 LAMP方法检测的灵敏度 60-61 2.7 Norwalk virus菌株的人工基因序列的合成及PCR 61-63 2.8 人工基因片段凝胶回收 63 2.9 人工基因片段的PCR产物加A尾 63 2.10 NVA基因片段的TA克隆 63-64 2.11 质粒DNA抽提 64 2.12 分别酶切pMD19-T-NVA和pET28a(+) 64 2.13 NVA基因片段与pET28a(+)载体的连接和转化 64-65 2.14 重组质粒pET28a(+)-NVA的筛选 65 2.15 重组质粒pET28a(+)-NVA酶切鉴定 65-66 2.16 以重组质粒pET28a(+)-NVA体外转录成mRNA 66 2.17 LAMP扩增产物的显色反应 66 第三节 结果与讨论 66-76 1.LAMP反应引物示意图及其基因扩增结果 66-68 2.LAMP反应条件优化 68-70 2.1 Mg2~+浓度 68-69 2.2 反应温度 69-70 2.3 反应时间 70 3.LAMP反应特异性 70-71 3.1 LAMP扩增产物特异性 70-71 3.2 LAMP引物特异性 71 4.LAMP法检测的灵敏度 71-72 5.显色反应 72-73 6.LAMP法和RT-PCR法检测诺如病毒的结果比较 73-75 7.LAMP法检测札如病毒结果 75-76 第四节 结论 76-78 第四章 结论 78-80 附录1 80-82 附录2 82-84 参考文献 84-90 攻读学位期间承担的科研任务与主要成果 90-92 致谢 92-94 个人简历 94-95
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中图分类: > 医药、卫生 > 基础医学 > 医学微生物学(病原细菌学、病原微生物学) > 人体病毒学(致病病毒)
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