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HSV-1特异转移因子的抗原依赖活性及其化学本质的研究
作 者: 黄莉莉
导 师: 苏成芝
学 校: 第四军医大学
专 业: 生物化学
关键词:
分类号: R392
类 型: 博士论文
年 份: 1986年
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内容摘要
转移因子(TF)是裂解白细胞的可透折物质,作为细胞免疫的调节因子得到广泛的研究并应用于临床。不少实验资料表明,TF能够增强非特异性细胞免疫反应。由于TF成分复杂,其化学本质迄今尚未确证,致使关于TF的抗原特异性实验结果不尽。一致,阻碍了TF的深入研究。因此分离和鉴定TF中能转移特异性细胞免疫的活性成分是继续深、入探讨TF的重要环节。 本研究从工型单纯疱疹病毒(HSV-1)为抗原制备特异性TF(TF HSV-1),用51Cr-白细胞粘附抑制实验和皮肤迟发型超敏反应鉴定TFHSγ-1的抗原依赖免疫活性,并观察其抗感染的保护效应;亲和色谱法分离纯化TFHSV-1特异活性成分,并进而阐明其化学本质。 199培养介质稀释的活HSV-1腹腔注射免疫小鼠(HSV-1东BHK21细胞中传代)。对照鼠注射199介质。以皮试反应制定免疫状态,免疫四周后取HSV-1免疫鼠和对照鼠的脾细胞裂解后径最高分子量截流范圈12,000-14,000 dalton的透折袋(美国 Spectran Medieal Industries公司)透析制成TF,分别称为TF HSV-1和TFn。 我们用51Cr白细胞粘附抑制实验体外鉴定TF HSV-1抗原
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全文目录
一、英文缩写字表 10-14 二、摘要(附英文摘要) 14-25 三、文献综述 25-54 (一).TF抗原特异性的研究 25-34 1.TF研究概况 25-27 2.TF的抗原特异性 27-34 (二).TF活性成分的分离纯化 34-44 (三).单纯疱疹病毒感染与治疗 44-54 1.单纯疱疹病毒感染 44-46 2.HSV感染与免疫 46-48 3.HSV感染的治疗 48-54 四.本研究的目的 54-55 五.统计学处理 55-56 六.论文正文 56-210 (一).HSV-1特异转移因子的抗原依赖活性 56-138 1.前言 56-59 2.材料 59-62 2.1.动物 59 2.2 仪器 59 2.3.试剂 59-60 2.4.抗原 60-62 3.方法 62-66 3.1.动物免疫 62 3.2.TF HSV-1的制备 62-63 3.3.TFn的制备 63 3.4.~(51)Cr—白细胞粘附抑制实验 63-64 3.5.皮肤实验 64 3.6.HSV—1腹腔接种 64 3.7.HSV—1脑腔接种 64-65 3.8.LD_(50)测定 65 3.9.脑常规组织学制片染色 65 3.10.PAP免疫酶染色 65-66 4.结果 66-127 4.1.TF理化性质分析 67-70 4.2.~(51)Cr—白细胞粘附抑制实验检测TFHSV—1抗原特异活性 70-78 4.2.1.~(51)Cr—标记白细胞最佳条件的选择 70-72 4.2.2.HSV-1抗原浓度与TF剂量选择 72-75 4.2.3.TF HSV—1依赖特异抗原的粘附抑制活性测定 75-78 4.3.TF HSV—1介导抗原特异皮肤迟发型超敏反应 78-95 4.3.1.TF HSV—1剂量与皮肤迟发型超敏反应的关系 80-82 4.3.2.TF HSV—1介导迟发型超敏反应的抗原依赖性 82-95 4.3.2.1.TF HSV—1介导抗原特异皮肤迟发型超敏反应的定量测定 83-84 4.3.2.2.皮试部位原组织学检查 84-95 4.4.TF HSV—1对HSV—1感染小鼠的保护作用 95-127 4.4.1.HSV-1脑炎小鼠模型的建立 96-118 4.4.1.1 HSV-1腹腔攻击小鼠的临床表现 97-98 4.4.1.2.HSV-1感染小鼠的脑形态学检查 98-100 4.4.1.3.HSV-1感染小鼠脑PAP免疫酶染色 100-118 4.4.2.TF HSV—1对HSV—1感染小鼠的保护作用 118-127 4.4.2.1.TF HSV—1对HSV—1感染小鼠存活时间及存活率的影响 119-120 4.4.2.2.TF处理小鼠脑形态学检查 120 4.4.2.3.正常小鼠脑形态学检查 120-127 5.讨论 127-137 5.1.特异TF的制备 127-130 5.1.1.抗原选择 127-128 5.1.2.供体致敏 128-130 5.1.3.分子量范围 130 5.2.~(51)Cr-白细胞粘附抑制实验是检测TF特异活性的灵敏方法 130-133 5.3.TF_(HSV-1)对HSV-1感染小鼠的保护作用 133-137 6.小结 137-138 (二).HSV-1特异转移因子活性成分的分离 138-165 1.前言 138-140 2.材料 140-142 2.1.仪器 140 2.2.试剂 140-142 3.方法 142-144 3.1.HSV-1抗原免疫吸附剂的制备 142 3.2.亲和色谱法纯化TF_(HSV-1)特异活性成分 142-143 3.3.对照吸附剂的制备 143-144 4.结果 144-156 4.1.亲和色谱法分离TF_(HSV-1)特异成分 144-149 4.1.1.BSA和戊二醛用量选择 144 4.1.2.偶联率测定 144-145 4.1.3.选译TF_(HSV-1)与免疫吸附剂的最佳反应时间 145-146 4.1.4.活性成分洗脱条件的选择 146-148 4.1.5.免疫吸附剂的特异性 148-149 4.2.TF_(HSV-1)特异成分体外介导对相关抗原的白细胞粘附抑制 149-152 4.2.1.不同浓度TF_(HSV-1)特异成分对相关抗原的粘附抑制效应 149-150 4.2.2.TF_(HSV-1)特异成分介导抗原依赖的白细胞粘附抑制 150-151 4.2.3.TF_(HSV-1)纯化前后LAI活性的比较 151-152 4.3.TF_(HSV-1)特异成分在HSV-1感染过程中的保护效应 152-156 4.3.1.TF_(HSV-1)保护剂量曲线 152-153 4.3.2.TF_(HSV-1)特异成分对HSV-1感染小鼠的保护效应 153-156 5.讨论 156-164 5.1.TF特异活性成分的分离 156-160 5.2.TF_(HSV-1)纯化前后活性的比较 160-164 6.小结 164-165 (三).HSV-1特异转移因子活性成分的化学本质 165-210 1.前言 165-167 2.材料 167-171 2.1.仪器 167-168 2.2.试剂 168-171 3.方法 171-183 3.1.高效液相色谱法 171-172 3.1.1.试剂配制 171 3.1.2.操作 171-172 3.1.2.1.离子交换色谱 171 3.1.2.2.反相色谱 171-172 3.2.薄层层析 172-174 3.2.1.试剂配制 172 3.2.2.制板 172-173 3.2.3.薄层析 173-174 3.3.等电聚焦 174-177 3.3.1.试剂配制 174-175 3.3.2.制胶 175 3.3.3.电泳 175-177 3.3.4.电泳后凝胶的处理 177 3.4.凝胶层析法测定分子量 177-178 3.5.考马斯亮兰法测定多肽量 178-180 3.5.1.试剂配制 178-179 3.5.2.绘制标准曲线及样品测定 179-180 3.6.二苯胺法测定DNA量 180-181 3.6.1.试剂配制 180 3.6.2.操作 180-181 3.7.Orcinol法测定RNA量 181-182 3.7.1.试剂配制 181-182 3.7.2.操作 182 3.8.氨基酸分析 182-183 4.结果 183-204 4.1.TF高效液相色谱分析 183-193 4.1.1.离子交换色谱 183-188 4.1.2.反相色谱 188-193 4.2.TF_(HSV-1)特异成分薄层层析分析 193-195 4.3.TF等电聚焦分析 195-198 4.4.TF_(HSV-1)特异成分多肽、DNA和RNA含量测定 198 4.5.TF_(HSV-1)特异成分分子量测定 198-202 4.6.TF_(HSV-1)特异成分氨基酸组成及含量 202-204 5.讨论 204-209 5.1.TF特异活性成分的化学本质 204-207 5.2.TF与T细胞受体 207-209 6.小结 209-210 七.结论 210-213 八.致谢 213-214 九.参考文献 214-266
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中图分类: > 医药、卫生 > 基础医学 > 医学免疫学
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