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FoxO1对胰岛素抵抗细胞葡萄糖消耗的影响及机制研究

作 者: 饶小娟
导 师: 秦贵军
学 校: 郑州大学
专 业: 内分泌科
关键词: 胰岛素抵抗 FoxO1 RNA干扰 胰岛素受体底物-2
分类号: R587.1
类 型: 硕士论文
年 份: 2009年
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内容摘要


背景与目的胰岛素抵抗(insulin resistance,IR)是2型糖尿病(Diabetes mellitus,DM)发病机制中的一个重要因素,并且是肥胖,血脂异常,高血压,冠心病等代谢综合征的一个重要特征。因此IR一直是人们研究的热点。近年来,IR的发病机制,尤其是胰岛素信号转导异常在IR发生中的作用受到极大关注。叉头状转录因子O1(forkhead transcription factor O1,FoxO1)属于Fox转录因子O亚家族,是细胞内能量代谢的重要调节因子,同时也是胰岛素/胰岛素样生长因子-1(insulin/insulin-like growth factor 1,INS/IGF-1)信号通路中的关键分子。研究发现:FoxO1表达升高可上调糖异生途径关键酶的表达,影响肝脏葡萄糖输出;抑制糖尿病小鼠Foxo1基因表达后,发现其血糖水平显著下降,且肝脏组织糖异生途径关键酶的表达水平降低。以上研究表明FoxO1表达异常与IR有重要关系。但目前关于FoxO1与IR关系的研究尚少,抑制FoxO1表达能否改善IR及其详细机制尚不明确。胰岛素受体底物-2(insulin receptor substrate-2,IRS-2)是肝脏内的主要胰岛素受体底物(insulin receptor substrate,IRS)亚型,在胰岛素促进肝糖原合成,抑制糖异生和肝糖输出的信号转导中,IRS-2是重要信号分子,其表达异常可致肝脏IR。最近研究表明:通过转基因技术在大鼠肝脏增强FoxO1表达,饥饿状态时,表达增强FoxO1可通过反馈机制促进的IRS-2基因表达。然而,胰岛素抵抗状态时,抑制FoxO1基因表达对IRS-2表达的影响尚不清楚,关于两者关系的研究尚未见报道。本研究通过高浓度胰岛素诱导构建IR细胞模型,运用RNA干扰(RNAinterference,RNAi)技术抑制IR细胞中FoxO1基因表达,在此基础上使用葡萄糖氧化酶法检测糖的利用,采用免疫沉淀和western bolt技术检测IRS-2蛋白表达及酪氨酸磷酸化水平;旨在探讨抑制FoxO1基因表达对IR细胞葡萄糖利用的影响及可能机制,为研究FoxO1在IR发生发展过程中的作用打下基础,同时为IR的治疗提供一定的理论依据。材料与方法1.采用高浓度胰岛素(10-6mol.L-1)诱导HepG-2细胞24h,建立IR细胞模型,并研究IR细胞模型持续时间。2.FoxO1特异性小干扰RNA(small interference RNA,siRNA)载体的构建及测序鉴定。3.实验分组及处理。实验共分4组,A组:普通培养基孵育的HepG-2细胞组;B组:高胰岛素诱导建立的IR细胞组;C组:转染FoxO1 siRNA载体的IR细胞组;D组:转染试剂Lipofectamine2000为对照的IR细胞组。当细胞处于90%融合时进行转染,操作按照Lipofectamine2000说明书进行。4.荧光显微镜下观察转染情况。FoxO1 siRNA载体携带红色荧光标记,在转染后24h、48h、72h,分别于荧光显微镜下观查细胞内红色荧光的表达量,间接评估质粒载体转染入细胞的情况。5.转染后24h,计数细胞,调整细胞密度,各实验组均传代一次,在含有10-9mol.L-1胰岛素的培养液中孵育24h后,采用葡萄糖氧化酶法检测各组培养基中葡萄糖含量,以不铺细胞的空白孔为对照,计算24h葡萄糖消耗量。6.转染后48h,分别收集各组细胞,采用RT-PCR技术检测FoxO1mRNA的表达;采用Western blot,免疫沉淀技术检测IRS-2蛋白表达和IRS-2蛋白酪氨酸磷酸化水平。实验所得计量数值用平均数±标准差((?)±s)表示。采用统计软件SPSS12.0行统计学分析,两组间比较采用t检验,多组间比较采用单因素方差分析。以P<0.05为有统计学意义。结果1.胰岛素抵抗HepG-2细胞模型的建立及持续时间HepG-2细胞加人新配制的含有10-6mol.L-1胰岛素的培养液,并设无胰岛素的空白组,于37℃,5%CO2培养箱中孵育24h,随后胃于含10-9mol.L-1胰岛素的培养基中24h,采用葡萄糖氧化酶法检测培养基中的葡萄糖含量,以不钠细胞的空白孔为对照。结果表明胰岛素组与空白组比较,葡萄糖消耗量减少约47.58%(1.76±0.07 vs 3.37±0.08),胰岛素组细胞表现出明显的胰岛素抵抗。造模成功后,将模型组和空白组分别置于不含腆岛素的培养基中24、48、72h,重复上述方法计算葡萄糖消耗量,结果表明模型组细胞葡萄糖消耗量在48h内明显低于空白组(P<0.01),提示高浓度胰岛素诱导建立的胰岛素抵抗HepG-2细胞模型其IR特性在48h内较为稳定。2.重组质粒载体的测序将重组质粒载体用LB培养基扩大培养,提取质粒送往TaKaRa公司测序,测序结果显示同设计序列完全相同,载体构建成功。3.荧光显微镜下观察转染情况采用Lipofectamine2000为转染试剂,IR细胞转染携带红色荧光的FoxO1siRNA载体(pSIREN-DNR-DsRed-siFoxO1),24h后倒置荧光显微镜下观察细胞内可见红色荧光表达,48h后荧光表达明显增强,72h时荧光表达减弱,认为转染后48h FoxO1 siRNA载体在细胞内成功且大量表达。4.葡萄糖氧化酶法检测各实验组细胞葡萄糖消耗IR细胞组与普通细胞组相比,葡萄糖消耗明显减少(1.90±0.07 vs 2.81±0.08,P<0.01);转染FoxO1特异性siRNA载体的IR组与未转染IR组比较,葡萄糖消耗增加(2.03±0.14 vs 1.90±0.07,P<0.05);Lipofectamine2000处理组与IR组相比,葡萄糖消耗差异不具有统计学意义(1.84±0.10 vs 1.90±0.07,P>0.05)。5.RT-PCR技术检测各实验组FoxO1 mRNA的表达与普通细胞组相比,IR细胞组FoxO1 mRNA的表达增强(0.34±0.01vs0.31±0.01,P<0.05);IR细胞组在转染FoxO1特异性siRNA载体后,FoxO1 mRNA的表达水平明显下降(0.24±0.03vs 0.34±0.01,P<0.01);Lipofectamine2000处理组FoxO1 mRNA的表达与IR组相比,差异不具有统计学意义(0.33±0.03 vs0.34±0.01,P>0.05)。6.IRS-2蛋白表达及其酪氨酸磷酸化水平的检测Western blot分析结果显示IRS-2蛋白表达各组之间无显著性差异(F=1.20,P>0.05)。免疫沉淀结果显示:与普通细胞组相比,IR细胞组IRS-2酪氨酸磷酸化减低(Western blot灰度值(×103)为5.64±0.21 vs 6.92±0.14,P<0.01);转染FoxO1特异性siRNA载体后的IR细胞组与未转染IR组比较,IRS-2酪氨酸磷酸化增强(Western blot灰度值(×103)为6.66±0.17 vs 5.64±0.21,P<0.01);Lipofectamine2000处理组IRS-2酪氨酸磷酸化水平与IR组相比,差异不具有统计学意义(P>0.05)。结论1.高浓度胰岛素诱导建立的胰岛素抵抗HepG-2细胞中,FoxO1 mRNA的表达增强,IRS-2酪氨酸磷酸化降低;高浓度胰岛素可能通过影响胰岛素信号的正常转导,引起胰岛素抵抗。2.抑制胰岛素抵抗HepG-2细胞中FoxO1异常表达,可通过反馈调节IRS-2活性(酪氨酸磷酸化),改善胰岛素信号转导,提高胰岛素敏感性。

全文目录


摘要  3-7
Abstract  7-12
论文部分 FoxO1表达对胰岛素抵抗细胞葡萄糖消耗的影响及机制研究  12-43
  前言  12-13
  材料与方法  13-27
  实验结果  27-29
  讨论  29-34
  结论  34-35
  附图  35-40
  参考文献  40-43
综述 转录因子FoxO1与肝脏胰岛素抵抗的分子机制  43-56
  参考文献  50-56
中英文缩略词对照表  56-58
致谢  58

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中图分类: > 医药、卫生 > 内科学 > 内分泌腺疾病及代谢病 > 胰岛疾病 > 糖尿病
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