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抗卵清蛋白单克隆抗体的制备及卵清蛋白、醇溶蛋白ELISA检测方法的建立
作 者: 秦倩茹
导 师: 马洪明
学 校: 中国海洋大学
专 业: 水产品加工及贮藏工程
关键词: 单克隆抗体 卵清蛋白 醇溶蛋白 ELISA检测方法
分类号: R155.5
类 型: 硕士论文
年 份: 2010年
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内容摘要
过敏性疾病影响着全世界近1/4的人口,其中3%-5%为食物过敏,被世界卫生组织列为21世纪重点防治的三大疾病之一。2005年7月19日,美国国会通过一项“食品过敏源标签和消费者保护法(FALCPA)”法案,要求食品生产商清楚地标明该食品是否含有8种最常见的食品过敏原。而在检验检疫系统对进出口的食品进行常见的8大类过敏原(蛋、奶、大豆、花生、小麦、树果、鱼和贝类)检测,缺乏相应的标准和方法。本文致力于研究鸡蛋和小麦过敏原的检测方法,并为制定相应的标准提供理论依据。卵清蛋白是鸡蛋的主要蛋白质,也是鸡蛋的主要过敏原之一。本文制备了抗卵清蛋白单克隆抗体,建立了常见过敏原鸡蛋卵清蛋白的ELISA检测方法。以PBS溶解高纯度卵清蛋白,免疫8周龄的BALB/c小鼠3次,直至效价达到10-5之后,再加强免疫1次,三天后取小鼠脾细胞与SP2/0骨髓瘤细胞经PEG融合,经间接ELISA和有限稀释法筛选,获得了6株分泌抗卵清蛋白单克隆抗体的杂交瘤细胞株,分别是OVA-1C6、OVA-2F9、OVA-2D8、OVA-2D2、OVA-3H6、OVA-3G9,培养上清效价分别为1:30000、1:30000、1:10000、1:10000、1:5000、1:50000,细胞冻存复苏后效价不变;OVA-1C6的亚型是IgG2b,OVA-2D8和OVA-2D2是IgG2a,OVA-2F9、OVA-3H6和OVA-3G9的亚型是IgG1;与BSA、猪血清、兔血清均没有交叉反应。选取其中抗体效价最高的两株杂交瘤细胞OVA-2F9和OVA-3G9,制备腹水以及纯化,纯化后的抗体分别与HRP偶联。将偶联成功的HRP-2F9抗体作为酶标抗体,OVA-3G9作为包被抗体,经方阵滴定法确定最适的包被抗体浓度是1:200和酶标抗体工作浓度是1:1000,在最适浓度下优化双抗体夹心ELISA测卵清蛋白的条件。利用优化后的试验条件进行ELISA双抗体夹心法检测,建立卵清蛋白的标准曲线。检测的最佳线性范围是97.66ng/ml-6250ng/ml,r≥0.995,最低检测限度为97.66ng/ml,大约0.1ppm。在同一次实验内,样品的回收率在91.92%-100.34%之间,精密度CV为1.22%-5.14%,3次试验间精密度CV为3.17%-6.83%。可在4℃放置一个月。与鸡肉、猪肉、牛肉无交叉反应,对鸡蛋、鸭蛋、鹌鹑蛋中的卵清蛋白具有特异性。自制的ELISA试剂盒与RIDASCREEN成品试剂盒检测实际样品进行比较结果基本相符,并且检出灵敏度为成品试剂盒(1ppm)的10倍。醇溶蛋白是小麦等谷物类的主要过敏原,约占小麦种子贮藏蛋白总量的40%,因此可以作为小麦的检测指标,本文建立常见过敏原小麦醇溶蛋白的ELISA检测方法。以65%乙醇溶解sigma公司的小麦醇溶蛋白免疫BALB/c小鼠,免疫血清作为阳性对照。以鼠抗醇溶蛋白单抗为包被抗体,HRP标记兔抗醇溶蛋白多抗为酶标抗体,以方阵滴定法确定包被抗体的包被浓度是2μg/ml和酶标抗体的最适工作浓度是1:8000,在最适浓度下选择合适的封闭液,即含10%胎牛血清的PBST,建立双抗体夹心ELISA法检测醇溶蛋白,拟合标准曲线并制备醇溶蛋白试剂盒。检测的最佳线性范围是19.53-5000ng/ml, R2>0.99,最低检测限为19.53ng/ml,对应的食品样品检测限为7.81ppm。样品的回收率在93.57%~105.72%之间,试验内CV为3.07%-5.91%,试验间CV为0.26%-5.24%,对大麦有一定的交叉反应性,可在4℃放置两周,稳定性较好。本文分别建立了卵清蛋白定量和醇溶蛋白ELISA定量检测方法。准确度、精密度和稳定性均较高。其中卵清蛋白ELISA检测试剂盒定量检出灵敏度是进口产品的10倍,检测费用大约只有进口产品的一半,试剂盒的技术参数优于或达到国外同类产品的水平,能满足日常进出口检测的要求,并为国内制定相应的方法和标准奠定了理论基础。
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全文目录
摘要 5-7 Abstract 7-16 第一章 文献综述 16-26 1.1 食品过敏症及其发病机制 16-18 1.1.1 食品过敏症及危害 16-17 1.1.2 食品过敏的发病机制 17-18 1.1.3 食品过敏原的研究现状与进展 18 1.2 食品过敏原的检测方法 18-23 1.2.1 体内检测 18-19 1.2.1.1 双盲对照食品激发实验 19 1.2.1.2 皮肤试验 19 1.2.2 体外检测 19-22 1.2.2.1 酶联免疫吸附实验 19-20 1.2.2.2 放射过敏原吸附试验 20 1.2.2.3 组胺释放实验 20-21 1.2.2.4 食品过敏原指纹图谱快速检测法 21 1.2.2.5 蛋白质检测芯片法 21 1.2.2.6 PCR方法 21-22 1.2.2.7 生物共振技术检测法 22 1.2.3 国内外研究概况及国内存在的问题 22-23 1.3 研究目的及意义 23-26 第二章 卵清蛋白单克隆抗体的制备 26-47 2.1 试验材料 26-29 2.1.1 试验动物和细胞 26 2.1.2 主要实验试剂 26-27 2.1.3 主要实验仪器和耗材 27 2.1.4 主要试剂配制 27-29 2.1.4.1 常规试剂配制 27-28 2.1.4.2 细胞融合试剂配制 28 2.1.4.3 ELISA试剂配制 28-29 2.1.4.4 SDS-PAGE试剂配制 29 2.2 试验方法 29-36 2.2.1 动物免疫 29-30 2.2.2 小鼠血清效价的测定 30-31 2.2.3 杂交瘤细胞株的建立 31-35 2.2.3.1 饲养细胞的制备 31 2.2.3.2 SP2/0骨髓瘤细胞悬液的制备 31 2.2.3.3 免疫脾细胞悬液的制备 31-32 2.2.3.4 细胞融合 32 2.2.3.5 杂交瘤细胞的筛选 32 2.2.3.6 杂交瘤细胞的克隆 32-33 2.2.3.7 腹水法大量制备单克隆抗体 33-34 2.2.3.8 杂交瘤细胞的冻存 34 2.2.3.9 单克隆抗体的纯化 34-35 2.2.4 单克隆抗体的鉴定 35-36 2.2.4.1 单抗效价测定和腹水中的蛋白质含量测定 35 2.2.4.2 单抗类型和亚类的测定 35-36 2.2.4.3 腹水抗体的纯度分析 36 2.2.4.4 单抗的特异性鉴定 36 2.2.4.5 单抗的稳定性分析 36 2.3 结果与分析 36-43 2.3.1 免疫小鼠血清效价的测定 36-37 2.3.2 细胞融合和筛选结果 37-38 2.3.3 克隆化结果 38-39 2.3.4 单克隆抗体效价 39-40 2.3.5 单克隆抗体亚类的鉴定 40-41 2.3.6 腹水中蛋白质含量及抗体效价 41-42 2.3.7 腹水抗体纯度分析 42-43 2.3.8 单抗特异性的鉴定 43 2.3.9 单抗稳定性分析 43 2.4 讨论与小结 43-47 2.4.1 关于动物免疫 44 2.4.2 关于细胞融合 44-45 2.4.3 关于克隆和筛选 45 2.4.4 单克隆抗体的纯化 45 2.4.5 小结 45-47 第三章 卵清蛋白ELISA检测方法的建立 47-67 3.1 实验材料 47-50 3.1.1 主要实验试剂 47-48 3.1.2 主要实验器材 48 3.1.3 实验试剂的配制 48-50 3.1.3.1 标记抗体试剂配制 48 3.1.3.2 ELISA试剂配制 48-50 3.2 实验方法 50-54 3.2.1 HRP标记抗体的制备 50-51 3.2.1.1 简易过碘酸钠法 50 3.2.1.2 HRP标记抗体的工作浓度 50-51 3.2.2 常规双抗体夹心ELISA法的基本程序 51-52 3.2.3 包被抗体和酶标抗体的最适浓度的确定 52 3.2.4 双抗体夹心ELISA条件的优化 52-53 3.2.4.1 抗体包被条件的选择 52 3.2.4.2 封闭条件的优化 52-53 3.2.4.3 酶标抗体与待测抗原反应时间的优化 53 3.2.4.4 抗原与包被抗体反应条件的优化 53 3.2.4.5 底物作用时间的优化 53 3.2.5 卵清蛋白标准曲线的建立和最低检测限的确定 53 3.2.6 精密度、准确度和重复性验证 53 3.2.7 特异性验证 53-54 3.2.8 稳定性验证 54 3.2.9 试剂盒比较 54 3.3 结果与分析 54-63 3.3.1 HRP标记抗体检测 54-55 3.3.1.1 IgG量的测定 54-55 3.3.1.2 HRP标记抗体的工作浓度 55 3.3.2 包被抗体和酶标抗体的最适浓度 55-56 3.3.3 双抗体夹心ELISA条件的确定 56-59 3.3.3.1 抗体包被条件的确定 56-57 3.3.3.2 封闭条件的确定 57-58 3.3.3.3 酶标抗体与待测抗原的最佳反应时间 58 3.3.3.4 抗原与包被抗体的最佳反应条件 58-59 3.3.3.5 底物的最佳反应时间 59 3.3.4 优化的双抗体夹心ELISA基本程序 59-60 3.3.5 卵清蛋白定量的标准曲线和最低检测限 60 3.3.6 精密度、准确度和重复性验证 60-61 3.3.7 抗体夹心ELISA法的特异性 61 3.3.8 稳定性验证 61 3.3.9 与成品试剂盒比较结果 61-63 3.4 讨论与小结 63-67 3.4.1 关于免疫球蛋白标记技术 63-64 3.4.2 关于ELISA检测 64 3.4.3 关于ELISA封闭液的选择 64 3.4.4 ELISA反应条件的优化 64-65 3.4.5 标准曲线的拟合 65 3.4.6 小结 65-67 第四章 麦醇溶蛋白ELISA检测方法的建立 67-80 4.1 实验材料 67-70 4.1.1 主要实验动物 67 4.1.2 主要实验试剂 67-68 4.1.3 主要实验器材 68 4.1.4 主要实验试剂配制 68-70 4.1.4.1 ELISA试剂配制 68-69 4.1.4.2 各种封闭液配制 69 4.1.4.3 样品前处理 69-70 4.2 实验方法 70-72 4.2.1 免疫动物 70 4.2.2 酶标抗体浓度的初步确定 70 4.2.3 包被抗体浓度的初步确定 70 4.2.4 包被抗体和酶标抗体的最适浓度的确定 70 4.2.5 封闭液的选择 70-71 4.2.6 双抗体夹心ELISA法的基本程序 71 4.2.7 方法验证 71-72 4.2.7.1 醇溶蛋白定量标准曲线的建立 71 4.2.7.2 最低检测限的确定 71 4.2.7.3 精密度、准确度和重复性验证 71-72 4.2.7.4 特异性验证 72 4.2.7.5 稳定性验证 72 4.2.7.6 实际样品检测 72 4.3 结果与分析 72-77 4.3.1 免疫小鼠血清效价 72 4.3.2 酶标抗体浓度的初步确定 72 4.3.3 包被抗体浓度的初步确定 72-73 4.3.4 包被抗体和酶标抗体的最适浓度 73-74 4.3.5 封闭液选择 74 4.3.6 醇溶蛋白标准曲线的建立 74-75 4.3.7 精密度、准确度和重复性验证 75 4.3.8 特异性验证 75-76 4.3.9 稳定性验证 76 4.3.10 试剂盒应用 76-77 4.4 讨论与小结 77-80 4.4.1 关于ELISA封闭液的选择 77 4.4.2 标准曲线的拟合 77-78 4.4.3 ELISA试验的影响因素 78-79 4.4.4 小结 79-80 结论 80-81 参考文献 81-85 缩略词 85-86 致谢 86-87 个人简历 87 发表的学术论文 87
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中图分类: > 医药、卫生 > 预防医学、卫生学 > 营养卫生、食品卫生 > 饮食卫生与食品检查 > 食品卫生与检验
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