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微生物酶法从苦荞中制备槲皮素的工艺方法的研究

作 者: 熊宇
导 师: 邵继荣
学 校: 四川农业大学
专 业: 生物物理学
关键词: 微生物发酵 制备 槲皮素 β-O-糖苷酶 苦荞
分类号: TQ461
类 型: 硕士论文
年 份: 2010年
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内容摘要


微生物发酵是利用微生物生长代谢过程中产生的酶对目标底物进行特殊的酶促反应。其优越性在于反应条件温和、操作简便、成本低、危害少,可进行复杂的化学合成、天然产物转化。苦荞学名鞑靼荞麦(Fagopyrum tataricum),在四川、云南、贵州、陕西、是山区重要的粮食作物。苦荞植株的茎(秆),叶、籽粒等器官芦丁含量较高,但通常作为生产废弃物,其经济价值未能充分利用。本试验应用实验室已筛选出的一株具有将芦丁转化为槲皮素的活性青霉菌为材料,探讨了以苦荞为原料,通过微生物发酵制备具有较高纯度槲皮素的工艺方法。希望通过该工艺的构建,为以苦荞为原料制备槲皮素的工业化生产提供理论指导。菌株培养条件研究:首先通过考察菌株生长曲线,培养基中蔗糖、芦丁的含量以及培养温度等因素对菌株生长的影响,然后以培养基中蔗糖、芦丁的含量、培养温度、培养时间的四因素三水平正交试验优化菌株培养条件。研究显示,菌体培养的最优条件为蔗糖25g/L、培养温度32℃、芦丁2g/L、培养时间64小时。发酵条件研究:通过考察菌母液种龄、接种量、培养基pH、无机盐、氮源、碳源等因素,初步研究这些控制因素发酵效果的影响。然后以无机盐(硫酸锌)、料液比、培养温度、额外碳源的四因素三水平正交试验优化发酵的工艺条件。研究表明,最佳发酵条件为无机盐(硫酸锌)0.01%,料液比2.5:1(V/W),培养温度32℃,额外碳源(蔗糖)20g/L,以7%~11%的接种量接种种龄为68h的菌液、pH自然。槲皮素提取条件的研究:通过考察乙醇浓度、浸提时间、固液比等因素对产物回收的影响优化槲皮素的提取条件。研究表明,以75%的乙醇,固液比8:1,加热回流提取2小时能快速有效的回收产物。苦荞发酵制备槲皮素研究:分别选择苦荞植株的叶、茎(秆)、籽粒、壳进行发酵实验,检测底物中芦丁的消耗量以及槲皮素的生产量,研究表明各个器官中芦丁转化为槲皮素的比率分别达到94.3%、91.2%、89.1%、87.3%。经提纯干燥后,所得的槲皮素经HPLC检测,其纯度≥73%,从而证明以苦荞为原料发酵制备槲皮素的工艺方法可行,具有生产应用价值。β-O-糖苷酶的分离纯化及性质研究:试验中从菌株中提取β-O-糖苷酶粗酶液,用葡聚糖凝胶柱色谱(Sephadex G-75)和阴离子交换柱色谱(DEAE cellulose-32)进行分离和纯化,通过SDS-PAGE测定β-O-糖苷酶的分子量。结果表明,经纯化后酶的比活性由粗酶液56.3U/mg提高到362.27U/mg,纯化倍数达到了6.43倍,回收率为3.5%。酶的分子量约为68kDa,是一种单体酶。经测定,它的最适反应pH为6.0、最适反应温度为40℃。

全文目录


摘要  4-6
Abstract  6-10
1 文献综述  10-22
  1.1 前言  10
  1.2 微生物发酵的研究进展  10-12
    1.2.1 微生物发酵技术概述  10-11
    1.2.2 真菌固体发酵技术  11-12
    1.2.3 菌株的来源  12
  1.3 槲皮素的研究进展  12-16
    1.3.1 槲皮素的理化特性  12-14
    1.3.2 槲皮素的生物活性  14-15
    1.3.3 槲皮素的制备方法  15
    1.3.4 槲皮素的检测方法  15-16
  1.4 酶的分离纯化的一般方法  16-20
    1.4.1 酶的提取与制备概述  16-17
    1.4.2 酶提取与制备的方法  17-20
  1.5 研究的目的和意义  20
  1.6 研究内容  20-22
2 材料与方法  22-31
  2.1 仪器与药品  22
  2.2 菌株培养条件的优化  22-23
    2.2.1 菌株生长曲线的测定  22-23
    2.2.2 蔗糖浓度对菌体生长的影响  23
    2.2.3 芦丁浓度对菌体生长的影响  23
    2.2.4 培养温度对菌体生长的影响  23
    2.2.5 菌株培养条件的优化  23
  2.3 微生物发酵转化槲皮素的研究  23-25
    2.3.1 乙醇浸提槲皮素、芦丁的条件  23-24
    2.3.2 种龄对菌株活性的影响  24
    2.3.3 接种量对菌株活性的影响  24
    2.3.4 培养基pH值对菌株活性的影响  24
    2.3.5 不同的无机盐对菌株活性的影响  24
    2.3.6 添加额外营养物质对槲皮素转化的影响  24-25
    2.3.7 微生物固态发酵转化槲皮素发酵条件的优化  25
    2.3.8 苦荞不同器官发酵制备槲皮素  25
    2.3.9 HPLC条件以及工作曲线的建立  25
  2.4 β-O-糖苷酶的分离与纯化  25-31
    2.4.1 β-O-糖苷酶的分离  25-26
    2.4.2 β-O-糖苷酶的纯化  26
    2.4.3 β-O-糖苷酶性质的研究  26-27
    2.4.4 蛋白质含量的测定  27-28
    2.4.5 SDS-PAGE测定蛋白质的分子量  28-31
3 实验结果与分析  31-44
  3.1 菌株生长条件的研究  31-33
    3.1.1 菌株生长曲线  31
    3.1.2 碳源对菌体生长的影响  31-32
    3.1.3 芦丁对菌体生长的影响  32
    3.1.4 培养温度对菌体生长的影响  32
    3.1.5 菌株培养条件的优化  32-33
  3.2 微生物发酵转化槲皮素的研究  33-38
    3.2.1 乙醇浸提条件的优化  33-35
    3.2.2 种龄对菌株活性的影响  35
    3.2.3 接种量对菌株活性的影响  35-36
    3.2.4 培养基初始pH对菌株活性的影响  36
    3.2.5 不同的无机盐对菌株活性的影响  36-37
    3.2.6 添加额外营养物质对槲皮素转化的影响  37
    3.2.7 微生物固态发酵转化槲皮素发酵条件的优化  37-38
    3.2.8 苦荞不同器官发酵制备槲皮素  38
  3.3 β-O-糖苷酶的分离纯化以及酶活力测定  38-44
    3.3.1 β-O-糖苷酶制备及纯化  38-40
    3.3.2 SDS-PAGE测定β-O-糖苷酶的分子量  40
    3.3.3 蛋白质含量的测定  40-41
    3.3.4 β-O-糖苷酶酶活力的测定  41-42
    3.3.5 β-O-糖苷酶性质的研究  42-44
4 讨论与结论  44-50
  4.1 菌株的保存与活化  44
  4.2 微生物发酵法制备槲皮素的讨论  44-46
  4.3 β-O-糖苷酶的分离与纯化及性质研究  46
  4.4 几种检测方法的比较  46-48
  4.6 结论  48-50
参考文献  50-55
致谢  55

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中图分类: > 工业技术 > 化学工业 > 制药化学工业 > 中草药制剂的生产
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