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Her2靶向的小RNA药物输送系统治疗乳腺癌的研究
作 者: 窦双
导 师: 王均
学 校: 中国科学技术大学
专 业: 细胞生物学
关键词: RNA干扰 siRNA 癌症治疗 药物输送系统 Her2 融合蛋白纳米技术
分类号: R737.9
类 型: 博士论文
年 份: 2012年
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内容摘要
乳腺癌是女性最常见的恶性肿瘤之一,已成为当今女性的“第一杀手”。临床上常用的外科手术以及放疗、化疗等手段均面临诸多问题。小干扰RNA(siRNA)药物是近年来兴起的一种新型药物,为目前多种束手无策的疾病如乳腺癌等的治疗带来了新的曙光。然而,制约siRNA药物发展的最关键因素是它的给药系统,特别是发展靶向特异输送siRNA药物到达癌细胞和癌组织的技术;解决该问题的关键是发展能克服siRNA系统给药的屏障,以及将siRNA药物特异高效输送到癌组织和癌细胞的靶向给药系统。大量研究表明约有25%-30%乳腺癌患者的癌细胞表面人类生长因子受体2(human growth factor receptors2,Her2)过度表达。本论文利用Her2单链片段抗体既具有抗原亲和活性,又具有分子小、易穿透细胞外间隙到达深部的肿瘤细胞的特点,构建了Her2靶向的小干扰RNA药物输送系统,高效地将siRNA输送到Her2阳性乳腺癌,抑制Her2阳性乳腺癌的生长。第一部分:制备了可与乳腺癌细胞表面高表达Her2受体特异性结合的Her2单链片段抗体融合蛋白,包括Her2单链片段抗体鱼精多肽融合蛋白和易化学键合的Her2单链片段抗体。上述融合蛋白均在大肠杆菌中成功表达,并利用Ni-NTA与融合蛋白上的His-tag结合,得到了纯度较高的目的蛋白。第二部分:利用了Her2单链片段抗体鱼精多肽融合蛋白结合siRNA,将siRNA靶向输送到Her2阳性乳腺癌细胞,并抑制了Her2阳性乳腺癌的生长。以DNMTs基因为靶基因,通过该融合蛋白靶向输送siDNMTs到Her2阳性的BT474细胞,有效沉默了目的基因DNMTs的表达,使抑癌基因RASSF1A的启动子区发生去甲基化而被再次激活,从而抑制肿瘤细胞的增殖。经尾静脉注射融合蛋白与siDNMTs的复合物,显著抑制了裸鼠原位植入Her2阳性乳腺癌的增殖。第三部分:在聚乙二醇-聚乳酸嵌段聚合物为主要材料的siRNA内米给药系统的基础上,通过Her2单链片段抗体的修饰,获得了靶向输送siRNA到Her2阳性乳腺癌的纳米给药系统,促进了Her2日性乳腺癌细胞对siRNA的摄取。经Her2单链片段抗体修饰的纳米给药系统包载siPLKl,尾静脉注射后,由于其纳米效应在肿瘤组织被动富集,并进而通过受体-配体相互作用主动靶向肿瘤细胞,从而实现siRNA药物被动靶向和主动靶向输送的结合,更高效输送siRNA药物到Her2阳性的乳腺癌细胞和组织,有效沉默癌基因PLK1的表达,进而促进肿瘤细胞的凋亡,抑制了肿瘤生长,在动物水平提高了乳腺癌的治疗效果。
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全文目录
摘要 5-6 ABSTRACT 6-8 目录 8-12 第一章 绪论 12-35 1.1 乳腺癌及其治疗现状 12-14 1.1.1 乳腺癌发病机制 12-13 1.1.2 乳腺癌临床治疗手段 13-14 1.2 RNA干扰现象 14-16 1.3 siRNA与癌症治疗 16-20 1.3.1 siRNA的应用 16-17 1.3.2 siRNA在癌症治疗中的应用 17-20 1.4 治疗癌症的siRNA输送系统 20-24 1.4.1 化学修饰的siRNA给药体系 21 1.4.2 脂质类的siRNA给药体系 21-22 1.4.3 聚合物类的siRNA给药体系 22-23 1.4.4 键合和靶向输送siRNA的给药体系 23-24 1.4.5 物理方法输送siRNA的给药体系 24 1.5 Her2与乳腺癌治疗 24-28 1.5.1 Her2的生物学效应 24-25 1.5.2 Her2抑制剂 25-26 1.5.3 以Her2为导向的乳腺癌治疗 26-28 1.6 本论文的选题目的及主要研究内容 28-29 参考文献 29-35 第二章 Her2单链片段抗体及融合蛋白的表达和纯化 35-53 2.1 引言 35-36 2.2 实验部分 36-42 2.2.1 主要材料 36 2.2.2 主要药品及溶液配制 36-37 2.2.3 pET28a-Her2 ScFv-protamine表达载体的构建和蛋白纯化 37-40 2.2.4 pET28a-Her2 ScFv-cys表达载体的构建和蛋白纯化 40-42 2.3 结果与讨论 42-51 2.3.1 F5-P的表达和纯化 42-46 2.3.2 F5-cys的表达和纯化 46-51 2.4 本章小结 51-52 参考文献 52-53 第三章 Her2 ScFv融合蛋白靶向输送siRNA用于Her2阳性乳腺癌的治疗 53-79 3.1 引言 53-54 3.2 实验部分 54-64 3.2.1 主要药品及溶液配制 54-55 3.2.2 细胞培养 55-56 3.2.3 琼脂糖凝胶电泳检验F5-P融合蛋白结合siRNA的能力 56 3.2.4 F5-P融合蛋白输送siRNA到Her2阳性乳腺癌细胞 56 3.2.5 F5-P融合蛋白输送siDNMTs对DNMTs mRNA表达的影响 56-58 3.2.6 F5-P融合蛋白输送siDNMTs对DNMTs蛋白表达的影响 58-60 3.2.7 F5-P融合蛋白输送siDNMTs对RASSF1A甲基化的影响 60-61 3.2.8 F5-P融合蛋白输送siDNMTs对乳腺癌细胞增殖的影响 61 3.2.9 原位肿瘤模型建立 61-62 3.2.10 F5-P融合蛋白在荷瘤裸鼠体内的分布 62 3.2.11 F5-P融合蛋白输送siDNMTs抑制小鼠原位乳腺癌的生长 62 3.2.12 肿瘤组织中的DNMTs表达水平和RASSF1A甲基化的检测 62 3.2.13 免疫组织化学染色检测乳腺癌原位肿瘤细胞凋亡和增殖 62-64 3.3 结果与讨论 64-75 3.3.1 F5-P融合蛋白结合siRNA 64 3.3.2 F5-P融合蛋白将siRNA靶向输送到Her2阳性乳腺癌 64-67 3.3.3 F5-P融合蛋白输送siDNMTs下调靶基因的表达并抑制RASSF1A甲基化 67-69 3.3.4 F5-P融合蛋白输送siDNMTs抑制细胞增殖 69-70 3.3.5 F5-P融合蛋白输送siDNMTs抑制乳腺癌的生长 70-75 3.4 本章小结 75-76 参考文献 76-79 第四章 Her2靶向纳米颗粒输送PLK1-siRNA用于乳腺癌治疗的研究 79-108 4.1 引言 79-80 4.2 实验部分 80-88 4.2.1 原料及试剂 80-81 4.2.2 Mal-PEG-PLA纳米颗粒的制备 81 4.2.3 Her2靶向纳米颗粒的制备 81-82 4.2.4 细胞培养 82 4.2.5 靶向纳米颗粒与Her2亲和力的检测 82 4.2.6 纳米颗粒包载的siRNA生物学活性检测 82-83 4.2.7 细胞对靶向纳米颗粒的摄取 83-84 4.2.8 MTT实验检测包载siPLK1靶向纳米颗粒的生物相容性 84-85 4.2.9 靶向纳米颗粒输送siPLK1对PLK1 mRNA表达的影响 85-86 4.2.10 靶向纳米颗粒输送siPLK1对PLK1蛋白表达的影响 86 4.2.11 靶向纳米颗粒输送siPLK1对癌细胞凋亡的影响 86-87 4.2.12 靶向纳米颗粒输送siPLK1对癌细胞增殖的影响 87 4.2.13 原位肿瘤模型建立 87 4.2.14 靶向纳米颗粒在荷瘤裸鼠体内的分布 87 4.2.15 靶向纳米颗粒输送siPLK1抑制小鼠原位乳腺癌的生长 87-88 4.2.16 肿瘤组织中的PLK1表达水平检测 88 4.2.17 免疫组织化学染色检测乳腺癌原位肿瘤细胞凋亡和增殖 88 4.3 结果与讨论 88-104 4.3.1 靶向纳米颗粒的制备和表征 88-90 4.3.2 乳腺癌细胞的Her2和PLK1表达 90 4.3.3 靶细胞Her2受体与靶向纳米颗粒的亲和能力 90-91 4.3.4 包载在纳米颗粒中的siRNA具有良好的生物学活性 91-92 4.3.5 靶向纳米颗粒高效特异输送siRNA到Her2阳性乳腺癌细胞 92-94 4.3.6 包载siPLK1的靶向纳米颗粒下调靶基因表达 94-96 4.3.7 T-NP_(siPLK1)沉默靶基因表达更有效抑制Her2阳性乳腺癌细胞增殖 96-99 4.3.8 T-NP_(siPLK1)更有效诱导Her2阳性乳腺癌细胞凋亡 99-101 4.3.9 T-NP_(siPLK1)沉默PLK1基因表达而促进对Her2阳性乳腺癌生长的抑制 101-104 4.4 本章小结 104-105 参考文献 105-108 附录一 Her2靶向蛋白的DNA序列 108-110 附录二 实验仪器 110-111 致谢 111-112 在读期间发表的学术论文和取得的研究成果 112-113
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中图分类: > 医药、卫生 > 肿瘤学 > 泌尿生殖器肿瘤 > 乳腺肿瘤
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