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微波辅助合成用于开管毛细管电色谱柱的制备及应用性能的研究
作 者: 鄂红军
导 师: 杨屹
学 校: 北京化工大学
专 业: 应用化学
关键词: 微波辅助合成 PAMAM树枝状大分子 开管毛细管电色谱 荧光标记技术 毛细管酶微反应器
分类号: O657.7
类 型: 博士论文
年 份: 2009年
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内容摘要
开管毛细管电色谱作为毛细管电色谱的重要分支,结合了毛细管区带电泳的高柱效和高效液相色谱高选择性的优点,成为当今分析化学领域的研究热点。大量的末端官能团、紧密且精确控制的分子结构是树状大分子所具有的独特性质,PAMAM是通过支化基元逐步重复的反应得到的具有树枝状高度支化结构的大分子,将其引入到毛细管电色谱柱中可以大大增加柱的表面积、容量和选择性,提升柱的性能。微波加热作为一种不同于传统加热模式,具有内外同热、热应力小、效率高、加热速度快的特点。本文将开管毛细管电色谱柱的制备技术,PAMAM树枝状大分子和微波辅助合成方法相结合,开展以下研究工作。采用微波辅助合成方法快速地制备了PAMAM树枝状大分子为固定相的开管毛细管电色谱柱。在微波加热的条件下,通过丙烯酸甲酯与KH 550的端氨基发生Micheal加成反应,得到半代的PAMAM,之后端酯基与乙二胺发生酰胺化反应,得到一代的枝形大分子PAMAM,重复以上,制得二代、三代树枝状大分子修饰的毛细管开管电色谱柱。首次尝试用FITC荧光标记的方法对制得的PAMAM修饰的开管毛细管电色谱柱进行表征,结果表明微波辅助合成方法用于制备PAMAM树枝状大分子修饰毛细管柱是可行的。与常规方法相比,微波辅助合成方法大大地缩短了PAMAM/OTCEC柱的制备周期。获得的3G PAMAM/OTCEC柱对丙氨酸和辅氨酸达到了基线分离。用丙酮考察获得PAMAM/OTCEC柱,迁移时间的RSD<3.O%,说明制备的毛细管柱具有良好的重现性。用丙氨酸和辅氨酸对3 GPAMAM/OTCEC柱的稳定性进行测试,10天后峰面积RSD<6.0%,说明制得的开管毛细管色谱柱的具有良好的稳定性。利用微波辅助合成方法制备β-环糊精衍生物(Br-β-CD)为固定相的开管毛细管电色谱柱。通过FITC荧光标记的方法优化KH 550修饰毛细管柱的微波反应时间,在微波功率140 W,微波温度40℃的条件下,微波反应10 min,KH 550修饰毛细管柱的荧光强度最大。继续通入Br-β-CD,微波反应30 min,制得Br-β-CD/OTCEC柱。获得的毛细管柱对N-乙酰-DL-蛋氨酸、l-苯基-1,2-乙二醇达到基线分离。用丙酮和1-苯基-1,2-乙二醇考察制得毛细管柱的性能,实验结果表明,制得的Br-β-CD/OTCEC柱具有良好的稳定性和重现性。毛细管酶微反应器是从固定化酶术发展而来的,将酶固定在毛细管内,可以进一步减少酶的消耗量。本文以氨基酰化酶为模型,成功地制备3G PAMAM树枝分子修饰的毛细管柱酶微反应器。通过高分支PAMAM树枝状大分子的引入,可以大大增加表面固定酶的容量,并且减小固定化的酶分子在刚性基体表面出现构像变化的可能性,保持酶的活性。利用毛细管区带电泳(CZE)优化制备的酶微反应器的酶解条件,实验结果表明,酶解温度37℃,17.5μg mL-1N-乙酰-DL-蛋氨酸磷酸缓冲溶液(pH7.5,0.02 moL L-1),底物的流速4μL min-1,制备的毛细管酶微反应器具有良好的酶解效果。在优化条件下,考察10天内(每天酶解5次)酶解产物峰面积的变化。实验结果表明,10天后酶解产物的峰面积的RSD<10%,说明制备的毛细管柱酶微反应器具有良好的稳定性。β-环糊精柱撑水滑石(Mg2Al/SO3-β-CD/LD)是一种新型有机/无机杂化的纳米材料。本文以Mg2Al/SO3-β-CD/LDH为固定相,制备水滑石内壁修饰的毛细管电色谱开管柱,获得的毛细管柱在pH8.0Tris-HCl缓冲溶液中对1-苯基-1,2-乙二醇达到基线分离(Rs=3.03)。
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全文目录
摘要 4-7 Abstract 7-12 符号说明 12-19 第一章 绪论 19-51 1.1 开管毛细管电色谱 19-29 1.1.1 毛细管电泳 19-20 1.1.2 毛细管电色谱发展简史 20-21 1.1.3 毛细管电色谱的基本理论 21-25 1.1.4 开管毛细管电色谱 25-29 1.2 PAMAM树状大分子 29-35 1.2.1 树枝大分子的结构 29-30 1.2.2 树枝状大分子发展简史 30-32 1.2.3 PAMAM树枝大分子的合成方法 32-34 1.2.4 PAMAM树状大分子在分析中的应用 34-35 1.3 微波技术 35-37 1.3.1 微波化学反应的机理 35-36 1.3.2 微波辅助合成 36-37 1.4 固定化酶技术 37-41 1.4.1 固定化酶与游离酶 37-38 1.4.2 酶固定化的方法 38-40 1.4.3 毛细管酶微反应器 40-41 1.5 本论文课题的提出 41-43 参考文献 43-51 第二章 微波辅助合成用于PAMAM内壁修饰开管毛细管电色谱柱的制备及性能评价 51-72 2.1 前言 51-52 2.2 实验部分 52-54 2.2.1 仪器与试剂 52 2.2.2 PAMAM树枝状分子修饰毛细管柱的制备 52-54 2.2.3 FITC对PAMAM/OTCEC柱的表征 54 2.3 结果与讨论 54-69 2.3.1 FITC荧光标记条件的优化 54-62 2.3.2 PAMAM/OTCEC柱的表征 62-64 2.3.3 PAMAM/OTCEC柱的分离 64-67 2.3.4 重现性与稳定性 67-68 2.3.5 微波辅助制备与传统制备方法的比较 68-69 2.4 结论 69-70 参考文献 70-72 第三章 微波辅助合成用于β-环糊精衍生物为固定相的开管毛细管电色谱柱的制备及性能评价 72-85 3.1 前言 72-73 3.2 实验部分 73-75 3.2.1 仪器与试剂 73 3.2.2 β-环糊精衍生物(Br-β-CD)的制备 73-74 3.2.3 β-环糊精衍生物(Br-β-CD)为固定相的开管毛细管电色谱柱的制备 74-75 3.3 结果与讨论 75-81 3.3.1 FT-IR对Br-β-CD的表征 75 3.3.2 Br-β-CD为固定相的开管毛细管电色谱柱的制备和表征 75-77 3.3.3 EOF的测定 77-79 3.3.4 Br-β-CD为固定相的开管毛细管电色谱柱的分离 79-81 3.3.5 重现性和稳定性 81 3.4 结论 81-83 参考文献 83-85 第四章 基于PAMAM树枝状大分子的毛细管酶微反应器的制备 85-98 4.1 前言 85-86 4.2 实验部分 86-88 4.2.1 仪器与试剂 86 4.2.2 酶微反应器的制备 86-88 4.2.3 毛细管区带电泳分离的条件 88 4.3 结果与讨论 88-95 4.3.1 KH550毛细管柱酶微反应器酶解条件的优化 88-92 4.3.2 酶解产物的分离 92-93 4.3.3 3G PAMAM酶微反应器的最适底物浓度 93-94 4.3.4 毛细管酶微反应器的稳定性 94-95 4.4 结论 95-96 参考文献 96-98 第五章 β-环糊精柱撑水滑石内壁修饰开管毛细管电色谱柱的制备 98-107 5.1 前言 98-99 5.2 实验部分 99-102 5.2.1 仪器与试剂 99-100 5.2.2 磺化环糊精柱撑水滑石(Mg_2Al/SO_3-β-CD/LDH)的制备 100 5.2.3 β-CD/LDH/OTCEC柱的制备 100-102 5.3 结果与讨论 102-105 5.3.1 β-CD/LDH/OTCEC柱的表征 102-103 5.3.2 对1-苯基-1,2-乙二醇的分离 103-105 5.4 结论 105-106 参考文献 106-107 第六章 结论 107-109 6.1 结论 107-108 6.2 创新点 108-109 研究成果及发表的学术论文 109-111 致谢 111-112 作者和导师简介 112-113
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中图分类: > 数理科学和化学 > 化学 > 分析化学 > 仪器分析法(物理及物理化学分析法) > 色谱分析
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