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绵羊痘病毒E3蛋白对PKR调节作用的初步研究
作 者: 于少雄
导 师: 张强
学 校: 中国农业科学院
专 业: 兽医
关键词: 绵羊痘病毒 E3蛋白 干扰素 PKR
分类号: S858.26
类 型: 硕士论文
年 份: 2013年
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内容摘要
绵羊痘由绵羊痘病毒(Sheeppox virus, SPPV)引起,以在皮肤上产生特异的痘疮为特征,发生时严重影响家畜及畜产品国际贸易,是绵羊的重要疫病之一。对SPPV全基因组测序发现,第34号开放阅读框编码与痘苗病毒(Vaccinia virus,VV)E3蛋白同源的蛋白。研究表明,痘苗病毒编码的E3蛋白能够抑制干扰素系统中双链RNA依赖的蛋白激酶(Double-strandedRNA-dependent protein kinase,PKR)等抗病毒分子的活性。SPPV E3蛋白对PKR的作用尚无报道。本研究探究了SPPV的抗干扰素能力及SPPV E3蛋白对PKR介导的抗病毒信号通路的调节作用。研究内容如下:1. SPPV qPCR检测方法的建立为后续研究检测的需要,首先建立了SPPV的qPCR检测方法,检测其特异性、敏感性及重复性。结果显示,建立的qPCR检测方法特异性好(能够显著区分绵羊痘病毒和羊接触传染性脓疱性皮炎病毒),敏感性好(可检测102copies/μL的SPPV),重复性高(变异系数小于5%)。2.SPPV E3蛋白的生物信息学分析利用生物信息学软件分析SPPV E3L基因。SPPV E3L基因全长534bp,编码177位氨基酸,包括Z-alpha和DSRM两个保守的结构域;亚细胞定位预测显示,SPPV E3蛋白主要定位于细胞核和细胞质内;与VV E3蛋白相比,SPPV E3蛋白位于氨基末端的Z-alpha结构域变化较大,但位于羧基末端的DRBD结构域则较为保守,推测SPPV E3蛋白可能具有抑制PKR活化的功能。3. SPPV E3蛋白的表达、纯化与抗体制备扩增SPPV E3L基因,克隆至pGEX4T-1表达载体,以BL21(DE3)plysS宿主菌对目的蛋白进行诱导表达,获得SPPV E3蛋白;用GST结合琼脂纯化重组蛋白,用纯化的重组蛋白与等量弗氏佐剂混合后免疫BALB/c小鼠,制备SPPV E3蛋白的鼠抗血清,间接ELISA测定鼠抗血清效价为1:100000,可用于后续试验中对SPPV E3蛋白的检测。4. SPPV干扰素敏感试验及SPPV E3蛋白对PKR调节作用的探究用浓度范围为0-5000U/mL的IFN-β处理Vero细胞24h,感染SPPV,培养液中加入不同浓度IFN-β,待0U/mL IFN-β处理的细胞孔完全病变时,用建立的SPPV qPCR的检测方法对病毒拷贝数进行测定,结果显示100U/mL的IFN-β即可显著地抑制SPPV的复制,表明SPPV对IFN-β敏感。用pcDNA3.1(+)-SPPV E3L质粒转染Vero细胞,48h后分别用浓度为10、20、50μg/mL的polyI:C转染细胞刺激PKR的活化,8h后用RIPA裂解液裂解细胞提取细胞总蛋白进行Western-blot检测,结果显示随着polyI:C浓度的增加,细胞内PKR的磷酸化水平逐步提高,而SPPV E3蛋白的表达对这一过程无显著影响,表明SPPV E3蛋白在体外试验中不能抑制PKR的活化。
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全文目录
摘要 5-6 Abstract 6-13 第一章 绪论 13-21 1.1 引言 13 1.2 干扰素的抗病毒机制 13-15 1.3 E3 蛋白介导的痘苗病毒抗干扰素作用机制 15-20 1.3.1 通过抑制 PKR 活化 15-17 1.3.2 通过阻断 dsRNA 抑制 2′,5′-OAS/RNaseL 系统的活化 17-18 1.3.3 通过抑制 RNA 聚合酶Ⅲ介导的 dsRNA 传导通路 18 1.3.4 通过与 ISG15 结合并抑制其修饰活性 18-19 1.3.5 抑制 ADAR1 催化腺苷酸转化为次黄嘌呤的编辑活性 19 1.3.6 抑制 IRF3/7 的的活化 19-20 1.4 研究展望 20-21 第二章 绵羊痘病毒实时荧光定量 PCR 检测方法的建立 21-28 2.1 试验材料 21 2.1.1 毒株 21 2.1.2 主要试剂 21 2.1.3 仪器设备 21 2.2 试验方法 21-23 2.2.1 探针和引物的设计 21 2.2.2 质粒标准品的构建 21-22 2.2.2.1 外围引物的设计 21-22 2.2.2.2 外围片段的 PCR 扩增 22 2.2.2.3 外围片段的克隆 22 2.2.3 SPPV qPCR 检测方法反应体系的建立 22 2.2.4 qPCR 敏感性检验 22 2.2.5 qPCR 重复性检验 22 2.2.6 qPCR 特异性检验 22-23 2.3 试验结果 23-26 2.3.1 外围片段的 PCR 扩增 23 2.3.2 外围片段的克隆及鉴定 23 2.3.3 质粒标准品的制备 23-24 2.3.4 SPPV qPCR 检测方法的建立 24 2.3.5 SPPV qPCR 检测方法敏感性检验 24-25 2.3.6 SPPV qPCR 检测方法特异性检验 25-26 2.3.7 SPPV qPCR 检测方法重复性检验 26 2.4 讨论 26-28 第三章 绵羊痘病毒 E3 蛋白的生物信息学分析 28-35 3.1 试验材料 28 3.2 试验方法 28 3.3 试验结果 28-33 3.3.1 SPPV E3L 基因序列特征分析 28-29 3.3.2 SPPV E3 蛋白序列特征分析 29 3.3.3 SPPV E3 蛋白亚细胞定位分析 29 3.3.4 SPPV E3 蛋白疏水性分析 29-30 3.3.5 痘病毒科几种重要病原的序列分析 30-32 3.3.6 SPPV E3 蛋白二级结构分析 32 3.3.7 绵羊痘病毒 E3 蛋白的三级结构预测 32-33 3.3.8 SPPV E3 蛋白稀有密码子的分析 33 3.4 讨论 33-35 3.4.1 SPPV E3 蛋白序列特征及 E3 同源蛋白保守性分析 33 3.4.2 SPPV E3 蛋白的定位 33-34 3.4.3 绵羊痘病毒 E3 蛋白表达宿主菌的选择 34-35 第四章 绵羊痘病毒 E3L 基因的表达、纯化与抗体制备 35-42 4.1 试验材料 35 4.1.1 主要试剂 35 4.1.2 主要仪器 35 4.2 试验方法 35-37 4.2.1 SPPV E3L 基因的引物设计及合成 35 4.2.2 SPPV E3L 基因的 PCR 扩增 35-36 4.2.3 SPPV E3L 基因的克隆与鉴定 36 4.2.4 SPPV E3L 基因原核表达载体的构建 36 4.2.5 SPPV E3L 基因的诱导表达 36 4.2.6 SPPV E3 重组蛋白的抗原性分析 36-37 4.2.7 SPPV E3 重组蛋白的可溶性分析及纯化 37 4.2.8 重组蛋白 SPPV E3 鼠抗血清的制备及鉴定 37 4.3 试验结果 37-41 4.3.1 SPPV E3L 基因的扩增、T-A 克隆及鉴定 37 4.3.2 SPPV E3L 基因的原核表达载体构建 37-39 4.3.3 重组蛋白 SPPV E3 的诱导表达 39 4.3.4 重组蛋白 SPPV E3 的抗原性分析 39-40 4.3.5 重组蛋白 SPPV E3 的可溶性分析及纯化 40-41 4.3.6 SPPV E3 蛋白鼠抗血清的制备与鉴定 41 4.4 讨论 41-42 第五章 绵羊痘病毒 E3 蛋白对 PKR 作用活性的探究 42-49 5.1 试验材料 42-43 5.1.1 细胞及毒株 42 5.1.2 试剂 42 5.1.3 试剂配制 42-43 5.2 试验方法 43-44 5.2.1 细胞的复苏、传代和冻存 43 5.2.2 SPPV 干扰素敏感试验 43 5.2.3 IFN-β对细胞内 PKR 表达水平的影响 43 5.2.4 SPPV E3L 基因真核表达载体的构建及大量提取质粒 43-44 5.2.5 pcDNA3.1(+)-SPPV E3L 在 Vero 细胞中的表达及检测 44 5.2.6 瞬时表达 E3 蛋白对 polyI:C 刺激 PKR 活化中的影响 44 5.3 试验结果 44-47 5.3.1 绵羊痘病毒干扰素敏感试验 44-45 5.3.2 IFN-β对细胞内 PKR 表达水平的影响 45 5.3.3 SPPV E3L 基因真核表达载体的构建 45-46 5.3.4 pcDNA3.1(+)-SPPV E3L 重组质粒转染至 Vero 细胞及 SPPV E3L 的真核表达 46 5.3.5 瞬时表达 SPPV E3 蛋白对 polyI:C 刺激 PKR 活化中的影响 46-47 5.4 讨论 47-49 5.4.1 IFN-β能够显著地抑制 SPPV 的复制 47-48 5.4.2 瞬时表达 SPPV E3 蛋白不能抑制 polyI:C 诱导的 PKR 活化 48-49 第六章 全文总结 49-50 参考文献 50-55 致谢 55-56 作者简历 56
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中图分类: > 农业科学 > 畜牧、动物医学、狩猎、蚕、蜂 > 动物医学(兽医学) > 各种家畜、家禽、野生动物的疾 > 家畜 > 羊
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