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伊维菌素PLA/PLGA缓释微球的研究
作 者: 李贵玉
导 师: 梁剑平
学 校: 甘肃农业大学
专 业: 基础兽医学
关键词: 伊维菌素 IVM PLA/PLGA MS 实验设计 安全性 体外释放 药效
分类号: S859.79
类 型: 硕士论文
年 份: 2012年
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内容摘要
本研究以伊维菌素(IVM)即22,23双氢阿维菌素为模型药物,利用聚乳酸(PLA)及其共聚物聚乳酸羟基乙酸(PLGA)为载体(分子量分别为15000、20000、25000,分别缩称为PLA/PLGA1.5、PLA/PLGA2.0、PLA/PLGA2.5)制备IVM生物可降解缓释微球制剂。研究微球含量的测定方法、制备处方与工艺优化、体外释药试验、急性毒性试验、制剂稳定性试验和药效驱虫试验等内容,旨在通过IVM PLA/PLGA MS的缓释性能延长IVM的在动物机体内药效持续作用时间。1.IVM PLA/PLGA MS的制备及工艺优化。研究采用O/W乳化溶剂挥发法,在单因素试验考察基础上利用L9(34)正交实验设计确定优化处方工艺,制备IVM PLA/PLGA MS制剂;通过电镜扫描(SEM)观察了微球的粒径分布和外观形貌;采用HPLC建立了IVM含量测定方法,对方法的回收率、精密度进行了研究;测定了微球的包封率、载药量和回收率等指标。结果表明,IVM的最大吸收波长为245nm,建立的HPLC分析方法标准方程r=0.9992,在5100g/ml浓度范围内,线性关系良好;其平均回收率为99.01%,回收率的RSD为0.9185%,日内精密度和日间精密度的RSD均小于5%,说明该分析方法准确、稳定性好,可用于质量控制检测。采用最优工艺制备的IVM PLA/PLGA MS外观圆整光滑,分散性好;以PLA/PLGA2.0为例,其包封率分别为91.02%和90.79%,载药量分别为29.34%和30.11%,回收率分别为94.52%和95.37%,平均粒径分别为8.42±0.16m和10.23±0.31m。2.IVM PLA/PLGA MS体外释药试验及稳定性评价。以HPLC为测试手段,建立了微球的体外释放方法,确定了以pH7.4磷酸盐缓冲溶液和乙醇混合溶液为释放介质,恒温振荡透析袋透析法进行制剂体外释放的测定;通过光照、低温、温室联合和长期稳定性试验对微球稳定性进行了考察。结果表明,与IVM原药组相比微球具有明显的体外缓释效果,且分子量越大缓释效果越明显,连续18d观察累计释药量微球不超过70%;光照、低温试验对微球影响不大,RSD均在1%左右;温室联合试验影响较大,RSD在5%左右,所以药品阴凉处保存较好。3.IVM PLA/PLGA MS安全性评价。通过小鼠急性毒性试验,家兔肌肉、血管刺激性试验和溶血性试验对IVM PLA/PLGA MS的毒性及安全性进行考察。急性毒性试验结果表明,IVM PLA/PLGA MS的小鼠LD50为259.90mg/kg,LD5095%可信限范围为221.87304.44mg/kg,毒性极低;肌肉、血管刺激性试验和溶血性试验表明微球安全,刺激性小,对肌肉、血管和血细胞均无病理损害作用,临床使用比较安全。4. IVM PLA/PLGA MS缓释注射液对欧拉羊驱虫效果研究。选用甘南草原独有品种欧拉羊,在其颈部皮下注射4mg/kg剂量IVM PLA/PLGA MS缓释注射液。结果表明,微球与原药组0.4mg/kg剂量相比,治疗效果更明显,药效持续作用时间长,93d时粪便虫卵检测,IVM PLA/PLGA MS(PLA/PLGA2.5)虫卵减少率分别在75.90%、80.42%,而此刻原药组仅减少18.58%。
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全文目录
摘要 4-6 Summary 6-8 缩略词表 8-9 目录 9-12 第一章 文献综述 12-30 前言 12-13 1.1 伊维菌素国内外的研究进展 13-20 1.1.1 伊维菌素概述 13 1.1.2 伊维菌素的构效及性状 13-14 1.1.3 伊维菌素药效学 14-17 1.1.3.1 伊维菌素的抗虫普 14-15 1.1.3.2 伊维菌素的抗虫机制 15-16 1.1.3.3 伊维菌素的应用 16-17 1.1.4 伊维菌素药动学 17 1.1.5 伊维菌素毒理学 17-20 1.1.5.1 伊维菌素的毒性研究 17-18 1.1.5.2 伊维菌素的残留研究 18-19 1.1.5.3 伊维菌素的检测 19-20 1.2 缓控释制剂的研究 20-22 1.2.1 缓控释制剂概述 20-21 1.2.2 伊维菌素的制剂研究 21-22 1.2.3 伊维菌素缓控释制剂发展 22 1.3 聚乳酸生物可降解缓释微球研究 22-29 1.3.1 微球及聚乳酸类生物可降解材料概述 22-24 1.3.1.1 微球概述 22-23 1.3.1.2 聚乳酸类生物可降解材料概述 23-24 1.3.2 缓释微球制备方法概述 24-28 1.3.2.1 喷雾干燥法 25 1.3.2.2 相分离法 25-26 1.3.2.3 乳化 溶剂挥发法 26-28 1.3.3 缓释微球的降解 28-29 1.4 本课题研究依据及意义 29-30 第二章 伊维菌素缓释微球的制备及质量评价 30-47 2.1 试验材料 30-31 2.1.1 药品试剂 30 2.1.2 试验仪器 30-31 2.2 试验方法 31-34 2.2.1 微球的制备 31-32 2.2.1.1 空白微球的制备 31 2.2.1.2 伊维菌素缓释微球的制备 31-32 2.2.2 伊维菌素含量测定方法的建立 32-33 2.2.2.1 伊维菌素紫外吸收波长测定 32 2.2.2.2 标准曲线的绘制及伊维菌素含量测定 32 2.2.2.3 回收率测定 32 2.2.2.4 精密度测定 32-33 2.2.3 伊维菌素缓释微球的质量评价 33-34 2.2.3.1 微球形态、粒径大小及分布 33 2.2.3.2 微球载药量、包封率和回收率测定 33-34 2.2.4 伊维菌素缓释微球制备工艺的优化 34 2.3 结果与分析 34-44 2.3.1 微球的制备 34-35 2.3.2 伊维菌素含量的测定方法 35-40 2.3.2.1 伊维菌素紫外吸收波长测定 35-36 2.3.2.2 伊维菌素标准曲线的绘制 36-38 2.3.2.3 回收率测定 38-39 2.3.2.4 精密度测定 39-40 2.3.3 伊维菌素缓释微球的质量评价 40-42 2.3.3.1 微球形态、粒径大小及分布 40-42 2.3.3.2 微球的载药量、包封率和回收率测定 42 2.3.4 伊维菌素缓释微球制备工艺的优化 42-44 2.4 讨论 44-45 2.5 小结 45-47 第三章 伊维菌素缓释微球体外释药及稳定性评价 47-59 3.1 试验材料 47-48 3.1.1 药品试剂 47-48 3.1.2 试验仪器 48 3.2 试验方法 48-50 3.2.1 体外释放试验 49 3.2.2 稳定性试验 49-50 3.2.2.1 光照加速试验 49 3.2.2.2 温湿联合试验 49-50 3.2.2.3 低温加速试验 50 3.2.2.4 长期稳定性试验 50 3.3 结果与分析 50-57 3.3.1 体外释放试验 50-52 3.3.2 稳定性试验 52-57 3.3.2.1 光照加速试验 52-53 3.3.2.2 温湿联合试验 53-54 3.3.2.3 低温加速试验 54-56 3.3.2.4 长期稳定性试验 56-57 3.4 讨论 57-58 3.4.1 体外释放试验 57-58 3.4.2 稳定性试验 58 3.5 小结 58-59 第四章 伊维菌素缓释微球的安全性评价 59-69 4.1 试验材料 59-60 4.1.1 试验动物 59 4.1.2 药品试剂 59-60 4.1.3 试验仪器 60 4.2 试验方法 60-62 4.2.1 小鼠急性毒性试验 60-61 4.2.1.1 预试验 60 4.2.1.2 正式试验 60-61 4.2.2 肌肉刺激性试验 61 4.2.3 血管刺激性试验 61-62 4.2.4 溶血性试验 62 4.3 结果与分析 62-67 4.3.1 小鼠急性毒性试验结果 62-64 4.3.1.1 预试验结果 62-63 4.3.1.2 正式试验结果 63-64 4.3.2 肌肉刺激性试验 64-65 4.3.3 血管刺激性试验 65 4.3.4 溶血性试验 65-67 4.4 讨论 67-68 4.4.1 急性毒性试验 67 4.4.2 刺激性试验 67-68 4.4.3 溶血性试验 68 4.5 小结 68-69 第五章 伊维菌素缓释微球的药效学评价 69-75 5.1 动物与材料 69-70 5.1.1 试验动物 69 5.1.2 药品试剂 69 5.1.3 试验仪器 69-70 5.2 试验方法 70-71 5.2.1 动物分组和给药 70 5.2.2 样品采集 70 5.2.3 虫卵计数 70-71 5.2.4 虫卵减少率 71 5.3 结果与分析 71-73 5.3.1 虫卵计数 71-72 5.3.2 虫卵减少率 72-73 5.3 讨论 73-74 5.4 小结 74-75 结论 75-76 参考文献 76-81 致谢 81-82 个人简介 82-83 导师简介 83-84
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中图分类: > 农业科学 > 畜牧、动物医学、狩猎、蚕、蜂 > 动物医学(兽医学) > 兽医药物学 > 兽用药品
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