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金黄色葡萄球菌Al-2群体感应以icaR依赖的方式减弱生物膜形成
作 者: 于丹
导 师: 孙宝林
学 校: 中国科学技术大学
专 业: 生物化学与分子生物学
关键词: 金黄色葡萄球菌 生物膜 群体感应信号系统 AI-2
分类号: R378.11
类 型: 博士论文
年 份: 2013年
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内容摘要
金黄色葡萄球菌(金葡菌)是引起人类生物膜(Biofilm)感染的重要病原体。自诱导物2(Autoinducer2, AI-2)是一种负责细菌种间交流的信号分子,在革兰氏阳性和革兰氏阴性菌的群体感应(Quorum-sensing, QS)中均起着重要的调控作用,但是它在金葡菌生物膜形成中所扮演的精确角色还不清楚。本文证明了在静止、流动、厌氧和体内小鼠模型中,金葡菌RN6390B中AI-2合成酶基因luxS缺失导致生物膜形成增强,通过在luxS缺失株(ΔluxS)中外源添加化学合成的AI-2前体,可以恢复其成为野生型的生物膜表型。实时定量反转录PCR分析表明,AI-2激活了ica操纵子的一个抑制子icaR的转录,导致icaA的转录水平下降,这有可能是金葡菌中luxS缺失影响生物膜形成的主要原因。另外,我们利用AluxS,RN6911和Δagr AluxS菌株,比较了agr介导的QS系统和LuxS/AI-2QS系统在金葡菌中调节生物膜形成的关系。数据显示,agr介导的QS系统和LuxS/AI-2QS系统在金葡菌生物膜形成过程中的调控作用呈现累加效应。这些发现证明,AI-2通过一个激活icaR的途径降低金葡菌生物膜的形成。这些研究结果为金葡菌生物膜相关感染的治疗提供了线索。
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全文目录
摘要 5-6 ABSTRACT 6-7 目录 7-10 第1章 绪论 10-46 1.1 引言 10-11 1.2 金黄色葡萄球菌生理特性及致病机制 11-21 1.2.1 金黄色葡萄球菌的典型性质 11-13 1.2.2 金黄色葡萄球菌感染 13-14 1.2.3 毒力因子 14-15 1.2.4 小菌落变异体 15-16 1.2.5 毒力相关的基因调控 16 1.2.6 金黄色葡萄球菌基因组结构 16-19 1.2.7 甲氧西林抗性金黄色葡萄球菌株 19-21 1.3 生物膜的本质及特点 21-28 1.3.1 EPS和生物膜结构 23-25 1.3.2 生物膜基质主要成分 25-28 1.4 群体感应信号系统调控生物膜形成 28-32 1.4.1 群体感应信号系统 28-29 1.4.2 群体感应信号系统对革兰氏阳性细菌生物膜形成的调控 29-32 1.5 金黄色葡萄球菌的生物膜 32-36 1.5.1 金黄色葡萄球菌生物膜的模式 33-34 1.5.2 金黄色葡萄球菌生物膜形成的调控机制 34-36 1.6 金黄色葡萄球菌生物膜所致的疾病 36-38 1.7 宿主如何响应金黄色葡萄球菌生物膜感染 38-40 1.8 治疗和预防金黄色葡萄球菌生物膜感染 40-46 1.8.1 抗生素治疗 41 1.8.2 抗菌剂直接作用于感染部位治疗 41-42 1.8.3 疫苗 42-46 第2章 实验材料和方法 46-56 2.1 菌株与培养条件 46-47 2.1.1 菌株 46-47 2.1.2 培养基和染料 47 2.2 分子克隆操作 47-48 2.3 基因突变株构建 48-50 2.3.1 金葡菌感受态的制备(100ml) 48-49 2.3.2 luxS基因敲除株的构建 49 2.3.3 αgr和luxS双基因敲除株的构建 49-50 2.4 回补菌株构建 50 2.4.1 质粒回补 50 2.4.2 外源添加化学合成的AI-2回补 50 2.5 荧光菌株的构建 50-51 2.6 厌氧条件下的操作 51 2.6.1 厌氧培养基的准备 51 2.6.2 厌氧操作站的使用 51 2.7 生长曲线的测定 51-52 2.7.1 有氧条件下生长曲线测定 51-52 2.7.2 厌氧条件下生长曲线测定 52 2.8 生物膜的形成 52-54 2.8.1 有氧静止条件下成膜 52 2.8.2 厌氧静止条件下成膜 52 2.8.3 流动相flow cell成膜 52-53 2.8.4 体内导管模型中成膜 53-54 2.10 扫描电子显微镜 54 2.11 RNA的分离纯化 54-55 2.13 实时定量反转录PCR 55 2.14 Triton X-100诱导的细胞自溶检测 55 2.15 伦理学声明 55 2.16 统计学分析 55-56 第3章 实验结果 56-72 3.1 生物信息学分析luxS基因在细菌中的保守性 56-57 3.2 金葡菌RN6390B中的LuxS 57-58 3.3 luxS基因敲除 58-59 3.4 AI-2以浓度依赖的形式抑制静止状态生物膜的形成 59-61 3.5 AI-2抑制flow cell中生物膜的形成 61-62 3.6 突变luxS基因导致体内生物膜形成增强 62-63 3.7 AI-2抑制了icaA的转录水平 63-65 3.8 AI-2激活了icaR的转录水平 65 3.9 AI-2并不影响其他icaA调控子的转录水平 65-66 3.10 AI-2抑制了厌氧条件下生物膜的形成和icaA的转录水平 66-67 3.11 luxS突变株自溶速度减慢 67 3.12 SH1000金葡菌株中luxS突变后不影响生物膜形成 67-68 3.13 luxS缺失对细胞壁相关蛋白的表达没有显著影响 68-69 3.14 LuxS/AI-2 QS系统和agr介导的QS系统在生物膜调控中起到了累加的效应 69-72 3.14.1 激光共聚显微镜观测flow cell系统中生物膜形成的差异 69 3.14.2 厌氧条件下静止状态生物膜形成的差异 69-70 3.14.3 扫描电镜观测flow cell系统中的生物膜形成的差异 70 3.14.4 厌氧瓶中生物膜形成的差异 70-72 第4章 讨论 72-76 4.1 关于本文实验结果可参考性的讨论 72 4.2 关于体内AI-2回补的问题的讨论 72 4.3 关于本文实验结果与之前研究结果差别的讨论 72-73 4.4 关于AI-2影响icaR作用机制的讨论 73 4.5 关于AI-2在多种菌群生物膜形成中作用的讨论 73-76 参考文献 76-86 致谢 86-88 在读期间发表的学术论文与取得的其他研究成果 88
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中图分类: > 医药、卫生 > 基础医学 > 医学微生物学(病原细菌学、病原微生物学) > 病原细菌 > 球菌 > 葡萄球菌
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