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拟南芥类脂转移蛋白AtDHyPRP1的亚细胞定位及其对灰霉菌和丁香假单胞菌的抗性功能
作 者: 张晨
导 师: 徐子勤
学 校: 西北大学
专 业: 细胞生物学
关键词: AtDHyPRP1 过表达 RNAi 丁香假单胞菌 蒜薹灰霉菌 拟南芥 秦烟95 DAB染色 台酚兰染色 亚细胞定位 SAR
分类号: S432.2
类 型: 硕士论文
年 份: 2012年
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内容摘要
拟南芥AT4G22470基因编码的蛋白质由信号肽、两个富含脯氨酸结构域(Proline-Rich Domain, PRD)和两个8CM(Eight Cysteine Motif)构成。由于对该基因的功能尚未见报道,本工作将其命名为AtDHyPRP1(DOUBLE HYBRID PROLINE-RICH PROTEIN1)。采用DNAStar MegAlign中的CLUSTAL W算法比对氨基酸序列,发现AtDHyPRP1的8CM与植物LTP在8个半胱氨酸的分布位置上十分相似。AtDHyPRP1的理论等电点和分子量分别为8.68和38789.6Da,其分子式为C1772H2800N4440487S21,原子总数为5524。AtDHyPRP1蛋白的N端1-23位氨基酸具有典型的信号肽特征,可能性达到0.999。该蛋白无跨膜区域,其疏水性平均值为1.103,表明该蛋白为疏水性蛋白。二级结构预测结果显示,AtDHyPRP1蛋白N末端存在螺旋、无规则卷曲和折叠等多种结构形式。基因芯片分析数据表明,丁香假单胞菌侵染后AtDHyPRP1基因可以被强烈诱导。为了研究AtDHyPRP1的功能,本工作采用PCR方法扩增了它的编码序列,并连接到CaMV35S启动子下游,构建产生植物双元表达载体pRI101-AN-AtDHyPRP1,然后通过农杆菌介导的叶盘转化方法得到了转基因烟草植株。PCR、Southern印迹、RT-PCR和Northern印迹分析结果证实AtDHyPRP1基因已经整合进烟草基因组并能够有效表达。用蒜薹灰霉菌孢子侵染切下的野生型和转基因烟草叶片,发现AtDHyPRP1基因能够明显增加烟草对灰霉菌的抗性,转AtDHyPRP1烟草叶片的被侵染部位有大量H202积累。台酚兰染色结果表明,与转AtDHyPRP1烟草相比,野生型植株叶片上有大量死亡的细胞,说明该基因在抵抗生物胁迫过程中具有重要作用。同时将AtDHyPRP1基因开放阅读框序列连接到pCAMBIA1302中的绿色荧光蛋白基因之前,构建产生融合表达载体,通过农杆菌介导的浸花法得到了3株35S::AtDHyPRP1-GFP转基因拟南芥植株。激光共聚焦显微观察结果显示AtDHyPRP1蛋白定位在细胞表面,这一结果与生物信息学和抗性分析结果一致,说明该蛋白在合成后被分泌到植物细胞的表面来执行特殊的功能,与植物的抗病防御机制有关。为了进一步的研究AtDHyPRP1在抗病反应中的功能,本工作通过农杆菌介导的浸花法得到了4株AtDHyPRPl过表达(OX)和6株RNA干扰(RNAi)拟南芥植株,并利用AtDHyPRPl基因上下游引物以及Bar基因上下游引物通过PCR从T-DNA(?)插入系筛选得到5株纯合的敲除突变体(KO)。RT-PCR分析结果表明,AtDHyPRP1在过表达植株中明显上调,在RNA干扰株系中表达量下调,在T-DNA敲除纯合突变体中不能表达。在Ws野生型植株(Wt)中,AtDHyPRP1表达受有毒丁香假单胞菌Pst DC3000(Pseudomonas syringae pv. tomato DC3000)和无毒丁香假单胞菌Pst avrRpm1诱导,并且在Pst DC3000侵染24h和Pst avrRpm1侵染8h后达到峰值,随后略有降低,在48h后又表现增加。接种蒜薹灰霉菌(Botrytis cinerea)、有毒丁香假单胞菌Pst DC30004天以后,不同材料被灰霉菌侵染的程度依次为OXSAR分析中,先用无毒Pst avrRpm1(AV)或MgSO4(MV)接种叶片,再用有毒Pst DC3000接种其它叶片,4天后发现,相对于MV处理,过表达、野生型和RNAi植株经AV处理后叶片的萎黄和坏死现象明显减轻,过表达、野生型植株的大部分叶片仍然保持绿色,而T-DNA敲除纯合突变体株系经AV和MV处理后并无明显差别,大部分叶片都已萎黄。统计学分析结果显示,AV处理后T-DNA敲除纯合突变体的细菌生长量明显高于野生型Ws,而MV处理后T-DNA敲除纯合突变体与野生型Ws的细菌生长量并无明显差别。以上结果显示AtDHyPRPl基因在拟南芥抵抗病原菌侵染过程中具有重要功能。
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全文目录
摘要 3-5 Abstract 5-13 第一章 引言 13-26 1.1 植物脂质转移蛋白(LTP)研究进展 13-16 1.1.1 LTP的理化性质 13 1.1.2 植物LTP在细胞中的定位 13-14 1.1.3 LTP家族的生物学功能 14-15 1.1.3.1 LTP与信号转导 14 1.1.3.2 LTP在角质、胚胎形成方面的功能 14 1.1.3.3 LTP的抗性和防御功能 14-15 1.1.4 AtDHyPRP1基因的研究进展 15-16 1.2 绿色荧光蛋白(GFP) 16-18 1.2.1 GFP的理化性质 16-17 1.2.2 GFP在生物学中的应用 17-18 1.2.2.1 GFP是最重要的报告基因 17 1.2.2.2 GFP可作为蛋白质研究的标签 17-18 1.3 植物抗病机制 18-24 1.3.1 超敏反应(Hypersensitive Response,HR) 18-19 1.3.2 系统获得性抗性(systemic acquired resistance,SAR) 19-20 1.3.3 拟南芥与丁香假单胞菌之间的互作关系 20-24 1.3.3.1 丁香假单胞菌(Pseudomonas syringae) 20 1.3.3.2 拟南芥与丁香假单胞菌互作体系 20 1.3.3.3 拟南芥与丁香假单胞菌互作体系中的R基因和Avr基因 20-22 1.3.3.3.1 拟南芥与丁香假单胞菌互作体系中的R基因 20-21 1.3.3.3.2 拟南芥与丁香假单胞菌互作体系中的Avr基因 21-22 1.3.3.4 拟南芥与丁香假单胞菌体系的互作模型 22-24 1.4 本工作的研究目的 24 1.5 研究内容 24-26 第二章 AtDHyPRP1蛋白的计算机分析 26-32 2.1 方法 26 2.1.1 生物信息学软件 26 2.1.2 方法 26 2.2 结果 26-30 2.2.1 AtDHyPRP1蛋白的结构特征 26-27 2.2.2 AtDHyPRP1蛋白的理化性质 27-29 2.2.3 AtDHyPRP1蛋白的结构分析 29-30 2.2.4 AtDHyPRP1与植物LTP的氨基酸序列比对 30 2.2.5 AtDHyPRP1基因的芯片数据分析 30 2.3 讨论 30-32 第三章 AtDHyPRP1敲除突变体、过表达、RNA干扰与35S::AtDHyPRP1-GFP转基因株系的筛选与鉴定 32-60 3.1 材料与方法 32-46 3.1.1 材料与试剂 32 3.1.2 AtDHyPRP1过表达株系的筛选 32-38 3.1.2.1 AtDHyPRP1基因的克隆 32-37 3.1.2.2 AtDHyPRP1基因过表达载体的构建 37-38 3.1.3 35S::AtDHy-PRP1-GFP融合表达载体的构建 38-40 3.1.4 AtDHyPRP1 RNA干扰载体的构建 40-42 3.1.4.1 反向片段的连接 40-41 3.1.4.2 正向片段的连接 41-42 3.1.5 T-DNA敲除纯合突变体的筛选 42 3.1.5.1 BASTA筛选 42 3.1.5.2 PCR筛选 42 3.1.6 AtDHyPRP1过表达、RNAi与35S::AtDHyPRP1-GFP转基因拟南芥植株的筛选与鉴定 42-46 3.1.6.1 农杆菌LBA4404感受态细胞的制备 42-43 3.1.6.2 农杆菌感受态细胞的冻融法转化 43 3.1.6.3 农杆菌介导的拟南芥转化 43-45 3.1.6.4 转基因拟南芥植株的筛选与鉴定 45-46 3.2 结果 46-58 3.2.1 AtDHyPRP1过表达拟南芥转基因株系的筛选 46-50 3.2.1.1 AtDHyPRP1基因的分离与过表达载体pRI101-AN-AtDHyPRP1的构建 46-47 3.2.1.2 通过冻融法将RI101-AN-AtDHyPRP1过表达载体转化至农杆菌LBA4404 47-48 3.2.1.3 AtDHyPRP1过表达转基因株系的筛选与鉴定 48-50 3.2.2 35S::AtDHyPRP1-GFP拟南芥转基因株系的筛选 50-54 3.2.2.1 融合表达载体pCAMBIA1302-AtDHyPRP1-GFP的构建 50-51 3.2.2.2 通过冻融法将融合表达载体pCAMBIA1302-AtDHyPRP1-GFP转化至农杆菌LBA4404 51-52 3.2.2.3 35S::AtDHyPRP1-GFP拟南芥转基因株系的筛选与鉴定 52-54 3.2.3 AtDHyPRP1 RNAi拟南芥株系的筛选 54-57 3.2.3.1 RNA干扰载体RNAi-AtDHyPRP1的构建 54-55 3.2.3.2 通过冻融法将RNA干扰载体RNAi-AtDHyPRP1转化至农杆菌LBA4404 55 3.2.33 AtDHyPRP1 RNAi拟南芥株系的筛选与鉴定 55-57 3.2.4 T-DNA敲除纯合突变体株系的筛选 57-58 3.2.4.1 Basta选择 57 3.2.4.2 AtDHyPRP1在纯合突变体中的表达分析 57-58 3.3 讨论 58-60 第四章 AtDHyPRP1的亚细胞定位及其对灰霉菌的抗性 60-76 4.1 材料与方法 60-67 4.1.1 材料与试剂 60 4.1.2 转AtDHyPRP1基因烟草植株的再生和分子鉴定 60-66 4.1.2.1 烟草的叶圆盘法转化 60 4.1.2.2 转基因烟草的分子鉴定 60-66 4.1.2.2.1 转基因烟草的PCR检测 61 4.1.2.2.2 转基因烟草的RT-PCR检测 61-62 4.1.2.2.3 转基因烟草的Southern印迹分析 62-65 4.1.2.2.4 转基因烟草的Northern印迹分析 65-66 4.1.3 蒜薹灰霉菌侵染分析 66-67 4.1.4 AtDHyPRP1蛋白的亚细胞定位 67 4.2 结果 67-75 4.2.1 转AtDHyPRP1基因烟草的再生 67-68 4.2.2 转AtDHyPRP1基因烟草的PCR及RT-PCR检测 68-69 4.2.2.1 转AtDHyPRP1基因烟草的PCR检测 68 4.2.2.2 转AtDHyPRP1基因烟草的RT-PCR检测 68-69 4.2.3 转AtDHyPRP1基因烟草的Southern blotting分析 69 4.2.4 转AtDHyPRP1基因烟草的Northern blotting分析 69-70 4.2.5 转AtDHyPRP1基因烟草对蒜薹灰霉菌的抗性分析 70-71 4.2.6 台酚蓝染色 71 4.2.7 DAB染色 71-72 4.2.8 AtDHyPRP1蛋白的亚细胞定位 72-75 4.2.8.1 转AtDHyPRP1-GFP拟南芥根细胞的GFP荧光观察 72-73 4.2.8.2 转AtDHyPRP1-GFP拟南芥叶片细胞的GFP荧光观察 73-74 4.2.8.3 转AtDHyPRP1-GFP拟南芥茎细胞的GFP荧光观察 74 4.2.8.4 转AtDHyPRP1-GFP拟南芥根细胞中GFP荧光强度的变化 74-75 4.3 讨论 75-76 第五章 AtDHyPRP1对灰霉菌和丁香假单胞菌的抗性 76-86 5.1 材料与方法 76-78 5.1.1 材料 76 5.1.2 Pst DC3000和Pst avrRpt2侵染后AtDHyPRP1基因的表达分析 76 5.1.2.1 Pst DC3000和Pst avrRpt2侵染 76 5.1.2.2 RT-PCR分析 76 5.1.3 AtDHyPRP1过表达、RNA干扰、纯合突变体和Ws野生型拟南芥对蒜薹灰霉菌的应答特征 76 5.1.3.1 蒜薹灰霉菌的培养 76 5.1.3.2 侵染后的表型观察 76 5.1.4 AtDHyPRP1过表达、RNA干扰、纯合突变体和Ws野生型拟南芥对有毒Pst DC3000侵染的应答特征 76-77 5.1.4.1 丁香假单胞菌的培养 77 5.1.4.2 侵染后的表型观察 77 5.1.4.3 细菌生长量分析 77 5.1.5 系统性获得抗性(SAR)分析 77-78 5.1.5.1 侵染后的表型观察 77-78 5.1.5.2 细菌生长量分析 78 5.1.6 Pst DC3000侵染35S::AtDHyPRP1-GFP转基因拟南芥植株后AtDHyPRP1亚细胞定位的变化 78 5.1.6.1 Pst DC3000侵染35S::AtDHyPRP1-GFP转基因拟南芥植株后根细胞中AtDHyPRP1定位的变化 78 5.1.6.2 Pst DC3000侵染35S::AtDHyPRP1-GFP转基因拟南芥植株后叶片细胞中AtDHyPRP1定位的变化 78 5.2 结果 78-85 5.2.1 Pst DC3000和Pst avrRpt2侵染后AtDHyPRP1基因的表达特征 78-79 5.2.2 AtDHyPRP1过表达、RNA干扰、纯合突变体和Ws野生型拟南芥对蒜薹灰霉菌的应答特征 79 5.2.3 AtDHyPRP1过表达、RNA干扰、纯合突变体和Ws野生型拟南芥对Pst DC3000的应答特征 79-81 5.2.4 系统性获得抗性(SAR)分析 81-83 5.2.5 Pst DC3000侵染35S::AtDHyPRP1-GFP转基因拟南芥植株后AtDHyPRP1亚细胞定位的变化 83-85 5.3 讨论 85-86 结论 86-88 1 研究结论 86-87 2 本研究的特色与创新 87-88 参考文献 88-99 附录 99-101 攻读硕士学位期间取得的学术成果 101-102 致谢 102
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中图分类: > 农业科学 > 植物保护 > 病虫害及其防治 > 植物病害及其防治 > 植物免疫学
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