学位论文 > 优秀研究生学位论文题录展示

刺参育苗系统中敌害生物—玻璃海鞘(Ciona intestinalis)的防治

作 者: 周书珩
导 师: 王印庚;李胜忠
学 校: 新疆农业大学
专 业: 动物遗传育种与繁殖
关键词: 刺参 玻璃海鞘 敌害生物 毒理 半致死浓度
分类号: S947.9
类 型: 硕士论文
年 份: 2008年
下 载: 121次
引 用: 0次
阅 读: 论文下载
 

内容摘要


随着北方沿海刺参养殖业的兴起和养殖规模的日益扩大,刺参的敌害生物-玻璃海鞘对刺参的危害问题日趋严重,给广大刺参养殖业者造成了惨重的经济损失,严重制约了该产业的持续稳定发展。2006-2008年期间,笔者对玻璃海鞘进行了全面的调查。调查发现玻璃海鞘在我国黄、勃海域均有发生,在这两个海域为优势种。玻璃海鞘在山东地区6月初可发现肉眼可见的幼小个体,8月达到高峰,12月份有所减少,其它地区随温度和环境不同有一定差异。通过玻璃海鞘的耗氧率与排氮率的试验可知:耗氧率180C和排氨率230C时均为最大值,在刺参室外潮间带养殖池13~150C和育苗池200C左右刺参生长最快、摄食最旺时期,对刺参,尤其是育苗池中的稚参危害很大。十种渔药对玻璃海鞘(Ciona intestinalis)的急性毒性试验结果表明:硫酸锌(≤3mg/L)、碳酸氢钠(≤2.5%)、茶皂素(≤6.7ml/L)、氯氰菊酯(≤0.2ml/L)、精制敌百虫粉(≤4 mg/L)、敌百虫·辛硫磷粉(≤3mg/L)和高锰酸钾(≤5mg/L)对玻璃海鞘无致死作用。在24h内,硫酸铜浓度≥1mg/L、灭鞘灵(MQL)浓度≥5mg/L和自制草药复方药物除鞘散(CQS)浓度≥15mg/L时对玻璃海鞘有100%的致死作用,其24h的LC50值分别为0.58mg/L、3.33mg/L和10.80mg/L。硫酸铜浓度≥1mg/L时,刺参在3h内吐肠率达80%以上,对刺参能造成严重的生理伤害。因此,硫酸铜不适合在生产实践中使用。除鞘散浓度为20mg/L或灭鞘灵浓度为10 mg/L对刺参的毒性实验表明:药物浸泡刺参96h仍活动正常,对生存没有任何影响。因此,除鞘散、灭鞘灵可视为刺参养殖系统中杀灭玻璃海鞘的有效药物,分别采用15mg/L、5mg/L的浓度,药浴24小时换水即可完成。本文结果可为杀除玻璃海鞘提供理论依据。玻璃海鞘的组织形态学研究可以清晰地观察到玻璃海鞘的出、入水管孔、神经节、内柱、外套膜、心脏、精巢、卵细胞、生殖管、胃、肠和肛门。被囊在玻璃海鞘表面,咽与围鳃腔不明显。玻璃海鞘组织形态学的研究为今后研究玻璃海鞘组织病理学提供了重要的参考。

全文目录


摘要  4-6
ABSTRACT  6-11
第一章 综述  11-23
  1.1 玻璃海鞘的分类地位  11-12
  1.2 玻璃海鞘的发育过程  12-16
    1.2.1 玻璃海鞘的受精过程  12
    1.2.2 玻璃海鞘胚胎发育过程  12-14
    1.2.3 玻璃海鞘的幼体和变态发育  14-15
    1.2.4 玻璃海鞘成体的固着  15-16
  1.3 敌害生物刺参养殖的危害  16-20
    1.3.1 刺参养殖业的调查研究  16-18
    1.3.2 刺参的敌害生物的种类及治疗方法  18-20
  1.4 防治药物的选择  20-21
    1.4.1 对敌害生物的有效药物的选择  20-21
    1.4.2 对养殖刺参的安全用药  21
  1.5 结语  21-23
第二章 玻璃海鞘的形态、分布、种群变动规律和对刺参的影响  23-30
  2.1 材料与方法  23
  2.2 结果  23-28
    2.2.1 我国海鞘的分布  23-24
    2.2.2 玻璃海鞘、柄海鞘和乳突皮海鞘成体的主要形态特点  24-25
    2.2.3 玻璃海鞘种群的变动规律  25-26
    2.2.4 玻璃海鞘对刺参的影响程度  26-28
  2.3 讨论  28-29
  2.4 小结  29-30
第三章 玻璃海鞘的耗氧量和排氨率对刺参的危害  30-39
  第一节 玻璃海鞘的耗氧量  30-35
    3.1 材料与方法  31-32
      3.1.1 材料来源  31
      3.1.2 试验方法  31-32
    3.2 结果  32-33
      3.2.1 温度对玻璃海鞘耗氧率的影响  32-33
    3.3 讨论  33-35
  第二节 玻璃海鞘排氨率的研究  35-39
    3.4 材料和方法  35-39
      3.4.1 材料来源  35
      3.4.2 试验方法  35-36
      3.4.3 结果  36-37
      3.4.4 讨论  37-39
第四章 清除玻璃海鞘药物的筛选以及对玻璃海鞘的致死效果  39-48
  第一节 药物对玻璃海鞘的急性毒性试验  41-48
    4.1 材料和方法  42-44
      4.1.1 样品的采集与暂养  42
      4.1.2 试验药物  42-43
      4.1.3 试验条件与方法  43
      4.1.4 试验结果的判定  43-44
      4.1.5 数据处理  44
    4.2 结果  44-46
      4.2.1 对玻璃海鞘无致死作用的药物  44
      4.2.2 对玻璃海鞘有致死作用的药物  44-46
      4.2.3 敏感药物对玻璃海鞘的毒性作用  46
    4.3 讨论  46-48
第五章 硫酸铜、灭鞘灵和除鞘散对刺参的急性毒性试验  48-52
  5.1 材料和方法  48-49
    5.1.1 样品的采集与暂养  48
    5.1.2 试验药物  48
    5.1.3 试验条件与方法  48-49
    5.1.4 试验结果的判定  49
    5.1.5 数据处理  49
  5.2 结果  49-50
    5.2.1 初选药物对刺参的毒性  49-50
  5.3 讨论  50-52
第六章 玻璃海鞘的组织形态学及模式图的建立  52-61
  6.1 玻璃海鞘的组织形态学  52-54
    6.1.1 材料与方法  52-54
  6.2 结果  54-58
    6.2.1 入水管孔  54
    6.2.2 出水管孔  54
    6.2.3 神经节  54-55
    6.2.4 内柱  55
    6.2.5 胃  55-56
    6.2.6 肠  56
    6.2.7 肛门  56
    6.2.8 心脏  56
    6.2.9 精巢  56-57
    6.2.10 卵巢  57
    6.2.11 生殖管  57
    6.2.12 外套膜  57-58
  6.3 玻璃海鞘的模式图  58
  6.4 讨论  58-61
第七章 总结与展望  61-64
  7.1 本文的主要研究成果  61-62
  7.2 本研究对刺参敌害防治的作用和意义  62
  7.3 刺参敌害生物防治技术要点  62-63
  7.4 展望  63-64
参考文献  64-70
致谢  70-72
附录  72-73
作者简历  73

相似论文

  1. 毛纺用化学品毒性毒理数据库的建立,TS131
  2. 蜂胶软胶囊增强免疫功能和毒理性研究,R285
  3. 两亲接枝共聚膦腈的纳米毒性的初步研究,R943
  4. 仿刺参(Apostichopus japonicus)AFLP遗传连锁图谱的构建,S968.9
  5. 凡纳滨对虾Litopenaeus vannamei、仿刺参Apostichopus japonicus免疫增强剂使用频率和免疫疲劳的研究,S917.4
  6. 刺参(Apostichopus japonicus)主要营养成分和生理变化对养殖水体中关键环境因子的响应研究,S917.4
  7. 酶解海藻产物对刺参(Apostichopus japonicus)肠道菌群和免疫相关因子的影响,S968.9
  8. 刺参池塘有机物降解菌固定化及其对水质净化作用研究,X172
  9. 镉和壬基酚对鲫鱼肝细胞的毒理作用及联合作用的评价,X174
  10. 余氯对海洋生态系统供给功能影响的研究,X171.1
  11. 饵料、温度和盐度对刺参苗种生长与存活的影响研究,S968.9
  12. 不同饲料对刺参(Apostichopus japonicus)生长、消化生理和能量收支的影响,S968.9
  13. 人工参礁对刺参诱集效果的试验研究,S968.9
  14. 仿刺参微卫星DNA标记的筛选与应用及性别差异研究初探,S917.4
  15. 刺参(Apostichopus japonicus)微卫星标记的筛选及群体分析,S917.4
  16. 莫能菌素对蚯蚓的生态毒理效应研究,X174
  17. 刺参工厂化养殖环境调控技术的研究,S968.9
  18. 刺参幼参预消化配合饲料的研究,S968.9
  19. 环保型水稻种衣剂的研制与应用效果研究,S511
  20. 细菌对盐藻SZ-05生长影响及盐藻敌害生物防治,S476.1
  21. 仿刺参优良品系的筛选及杂交育种的初步研究,S968.9

中图分类: > 农业科学 > 水产、渔业 > 水产保护学 > 其他水产病虫害及其防治 > 其他
© 2012 www.xueweilunwen.com