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微小隐孢子虫两个miRNA表达检测及真核表达载体的构建
作 者: 呼高伟
导 师: 程天印; 陈兆国
学 校: 湖南农业大学
专 业: 基础兽医
关键词: 微小隐孢子虫 microRNA real-time PCR 真核表达质粒 靶基因
分类号: S852.7
类 型: 硕士论文
年 份: 2012年
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内容摘要
隐孢子虫病(cryptosporidiosis)是由原虫隐孢子虫(Cryptosporidium spp.)引起的一种人兽共患寄生虫病,临床上以自限性水样腹泻为主要症状。截止目前,临床上尚无特效的治疗药物和疫苗。同时,国内外也尚未见隐孢子虫microRNA (miRNA)发现和研究的报道。因此开展隐孢子虫的microRNA研究不仅有利于了解隐孢子虫的生长发育和调控机制,而且有助于发现新的药物作用靶标或设计新的疫苗,同时为有效防治该病提供新的途径。1、本实验室在前期工作中构建了微小隐孢子虫小RNA文库,并进行了序列测定和生物信息学分析,获得了微小隐孢子虫miRNA cp-miR-2980、 cp-miR-m0001的序列信息。本研究利用液氮研磨和Trizol试剂提取了6种/基因型隐孢子虫的总RNA,利用mirVanaTM miRNA Isolation Kit分离隐孢子虫的小RNA,用poly(A)聚合酶加尾后,再进行反转录,得到小RNA的cDNA模板。以微小隐孢子虫5S rRNA为内参,采用荧光定量PCR法检测cp-miR-2980、 cp-miR-m0001在Cryptosporidium andersoni、C. parvum、C. baileyi、 Cryptosporidium mouse genotype、C. cuniculus、C. suis6利,/基因型隐孢子虫卵囊中的表达情况。结果6种/基因型隐孢子虫卵囊均成功地检测出了cp-miR-2980、 cp-miR-m0001基因,但不同种/基因型隐孢子虫卵囊中的表达水平不同。本研究也同时证明荧光定量PCR是一种检测miRNA表达水平的简单、快速、敏感、特异、成本低的方法。2、从微小隐孢子虫(C. parvum)基因组DNA扩增cp-miR-2980、cp-miR-m0001前体,克隆到pMD18-T载体上,经测序鉴定正确后亚克隆到pVAX1载体上,转染HCT-8细胞,提取细胞总RNA, RT-PCR检测cp-miR-2980、cp-miR-m0001的表达。结果成功地构建了真核表达载体pVAX-cp-miR-2980、 pVAX-cp-miR-m0001, RT-PCR检测证实其均能在真核细胞HCT-8中表达,为后续研究cp-miR2980、cp-miR0001-5p的功能打下了基础。3、本实验室在前期工作中预测了微小隐孢子虫新的miRNA cp-miRm0001及其靶基因的序列信息,其中的一条靶基因为RAD50。本研究从微小隐孢子虫卵囊基因组DNA扩增到RAD50的3’非编译区(untranslation region, UTR)的部分序列,克隆到pMD18-T载体上,经测序鉴定正确后亚克隆到pGL3载体上,然后与pVAX-cp-m0001真核表达质粒共转染HCT-8细胞,同时共转染pRL-SV40质粒作为内对照,检测双荧光素酶活性。结果成功构建了含有440bp的RAD50基因3′UTR序列的荧光素酶报告基因重组质粒。将该重组质粒与pVAX-cp-miR-m0001一起共转染HCT-8细胞后,实验组的荧光素酶活性比值与对照组相比显著下降(P<0.05),说明cp-miR-m0001对RAD50的3’UTR荧光素酶报告基因载体的活性有抑制作用,这一抑制作用可能是由于cp-miR-m0001与RAD50的3′UTR的作用而产生的。本研究利用荧光定量PCR技术对6种/基因型隐孢子虫卵囊中cp-miR-2980、 cp-miR-m0001的表达情况进行了检测;构建了真核表达载体pVAX-cp-miR-2980、 pVAX-cp-miR0001并证实其能在真核细胞HCT-8中成功表达;成功构建了Cryptosporidium parvum Iowa Ⅱ RAD50的3′UTR荧光素酶报告基因载体,为进一步研究cp-miR-2980、cp-miR m0001的调控机制和功能提供了基础。
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全文目录
摘要 4-6 Abstract 6-11 第一章 文献综述 11-20 1 隐孢子虫病的研究概况 11-13 1.1 隐孢子虫病的危害性 11 1.2 隐孢子虫生活史 11-12 1.3 隐孢子虫病的预防和治疗 12-13 2 microRNA及其研究进展 13-20 2.1 miRNA的发现 13-14 2.2 新miRNA的判断标准 14 2.3 miRNA的结构特征和特点 14 2.4 miRNA的合成和作用机制 14-15 2.5 miRNA的分析方法 15 2.6 miRNA的检测方法 15-18 2.7 miRNA的应用 18-19 2.8 存在的问题及研究展望 19-20 第二章 微小隐孢子虫miR-2980、miR-m0001在不同种型隐孢子虫卵囊中的表达水平 20-31 1 材料与方法 20-21 1.1 材料 20-21 2 方法 21-25 2.1 隐孢子虫卵囊的收集 21-22 2.2 隐孢子虫卵囊的纯化 22 2.3 隐孢子虫卵囊总RNA的提取 22-23 2.4 分离和富集小RNA 23 2.5 加poly(A)尾 23-24 2.6 反转录合成cDNA 24 2.7 cp-miR-2980、cp-miR-m0001表达水平的检测 24-25 2.8 琼脂糖凝胶电泳 25 3 结果 25-28 3.1 小RNA的分离和鉴定 25 3.2 Real-time PCR检测结果 25-28 4 讨论 28-31 第三章 微小隐孢子虫miR-2980、miR-m0001的真核表达质粒的构建和初步鉴定 31-51 1 材料和方法 31-32 1.1 材料 31-32 2 方法 32-42 2.1 微小隐孢子虫microRNA的生物信息学分析 32 2.2 微小隐孢子虫基因组DNA的提取 32-33 2.3 cp-miR-2980前体、cp-miR-m0001前体引物的设计和合成 33 2.4 PCR扩增目的序列 33-34 2.5 琼脂糖凝胶电泳 34 2.6 pMD-pre-cp-miR-2980、pMD-pre-cp-miR-m0001质粒的构建 34-37 2.7 pVAX1-cp-miR-2980、pVAX1-cp-miR-m0001真核重组表达质粒的构建 37-39 2.8 重组质粒pVAX1-cp-miR-2980、pVAX1-cp-miR-m0001和pVAX1质粒的纯化和去除内毒素处理 39-40 2.9 转染HCT-8细胞 40-41 2.10 重组质粒在HCT-8细胞中的表达检测和分析 41-42 3 结果 42-49 3.1 微小隐孢子虫microRNA二级结构的分析和预测 42-43 3.2 对牛微小隐孢子虫microRNA的分析和预测 43-44 3.3 cp-miR-2980前体、cp-miR-m0001前体片段的扩增 44-45 3.4 重组质粒pMD-pre-cp-miR-2980和pMD-pre-cp-miR-m0001的酶切 45-46 3.5 重组质粒pVAX-cp-miR-2980和pVAX-cp-miR-m0001的酶切 46 3.6 重组质粒pVAX-cp-miR-2980和pVAX-cp-miR-m0001的序列测定结果 46-47 3.7 HCT-8细胞总RNA提取 47-48 3.8 RT-PCR检测结果 48-49 4 讨论 49-51 第四章 微小隐孢子虫miR-m0001靶基因的初步验证 51-60 1 材料和方法 51-52 1.1 材料 51-52 2 方法 52-56 2.1 微小隐孢子虫基因组DNA的提取 52 2.2 靶基因T引物的设计和合成 52 2.3 PCR扩增目的序列 52 2.4 琼脂糖凝胶电泳 52-53 2.5 扩增目的片段与pMD18-T载体的连接 53 2.6 pGL3 -T真核重组表达质粒的构建 53-54 2.7 重组质粒pGL3-T、pGL3和pRL-SV40质粒的纯化和去除内毒素处理 54 2.8 转染HCT-8细胞 54-55 2.9 双荧光素酶活性检测 55-56 3 结果 56-58 3.1 靶基因的扩增 56 3.2 重组质粒pMD-T的酶切鉴定 56-57 3.3 重组质粒pGL3-T的酶切鉴定 57 3.4 双荧光素酶报告基因检测与分析 57-58 4 讨论 58-60 全文结论与创新 60-61 1 全文结论 60 2 创新点 60-61 参考文献 61-67 附录Ⅰ 67-68 附录Ⅱ 68-70 致谢 70-71 个人简介 71
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中图分类: > 农业科学 > 畜牧、动物医学、狩猎、蚕、蜂 > 动物医学(兽医学) > 兽医基础科学 > 家畜寄生虫学
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