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胡杨microRNA Peu-miR156j和Peu-miR169o表达模式分析及功能鉴定
作 者: 段中鑫
导 师: 尹伟伦; 夏新莉
学 校: 北京林业大学
专 业: 植物学
关键词: 胡杨 脱水 高盐 超表达 peu-miR156j peu-miR169o
分类号: S792.119
类 型: 硕士论文
年 份: 2012年
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内容摘要
MicroRNAs又称miRNAs,是普遍存在于真核生物细胞中的一类非编码、长度约16-29个核苷酸的小分子RNA。miRNA通过对靶基因mRNA的降解或翻译抑制来调控真核细胞基因的表达。近年来发现其在生物体内有着很重要的调节功能,包括生长发育、激素反应、病毒诱导和逆境胁迫等众多方而。胡杨(Populus euphratica)是我国干旱荒漠区唯一自然成林的高大乔木树种,胡杨具有耐盐碱、耐贫瘠、抗旱等较强抗逆性。研究非生物逆境胁迫相关的胡杨miRNAs的调控机制,可以为培育高抗逆性新品种提供依据,具有重要的基础研究和应用研究价值。本实验基于实验室前人研究的基础上,以胡杨peu-miR156j和peu-miR169o作为研究对象。利用RT-PCR半定量和SYBR Green RT-PCR实时定量这两种方法分析了胡杨在脱水与高盐逆境胁迫下peu-miR156j和peu-miR169o的表达模式。结果表明,在上述两种非生物逆境胁迫下peu-miR156j和peu-miR169o均出现不同程度的表达上调,说明它们可能参与调控脱水与高盐逆境过程。为了进一步探索胡杨peu-miR156和peu-miR169的生物功能,本实验克隆了胡杨peu-miR156j和peu-miR169o(?)巧个前体基因并构建了相应的超量表达载体,从面获得了相应的35S.MIR156j和35S:MIR169o转基因植株。研究表明,35S:MIR156j增加了拟南芥莲座叶的发生,导致叶片浓密及开花延迟,并且在盐处理下的萌发率与生长状况优于野生型,同时miR156j还负调控靶基因SPL6、SPL9及SPL11。基于上述结果本研究推断miR156j可能通过调控与逆境胁迫相关的靶基因STRS2(逆境响应抑制物2)而发挥耐盐功能的分子机制。35S:MIR169o植株在形态上与野生型基本一致,但是盐处理下的萌发率以及存活率要明显高于野生型,并且在高盐逆境处理后野生型植株较早出现叶片萎焉,说明转基因植株具有更高的耐盐能力。在预测的靶基因中NF-YA1, NF-YA2和NF-YA8受miR169o负调控,说明这三种靶基因可能参与miR169o调控耐盐功能的分子机制。本研究对胡杨peu-miR156j和peu-miR169o的功能进行了初步鉴定,为以后进一步开展miRNA抗逆基因工程提供了依据。
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全文目录
摘要 3-4 ABSTRACT 4-6 縮略词表 6-7 目录 7-10 引言 10-11 1 文献综述 11-26 1.1 miRNA研究现状 11-24 1.1.1 植物miRNA的发现 11-13 1.1.2 植物miRNA的生物合成 13-14 1.1.3 植物miRNA的特点 14-15 1.1.4 植物miRNA的鉴定 15-18 1.1.4.1 传统的测序分析方法 16 1.1.4.2 高通量测序分析方法 16-17 1.1.4.3 生物信息学分析方法 17-18 1.1.5 植物miRNA的验证 18-19 1.1.5.1 Northern blotting 18-19 1.1.5.2 Stem-loop qRT-PCR 19 1.1.5.3 miRNA基因芯片 19 1.1.6 植物miRNA靶基因的预测及验证 19-21 1.1.6.1 植物miRNA靶基因的预测 20 1.1.6.2 植物miRNA靶基因的验证 20-21 1.1.7 植物miRNA的生物学功能 21-24 1.1.7.1 植物miRNA与生长发育的关系 22-23 1.1.7.2 植物miRNA与逆境的关系 23-24 1.2 研究的目的意义 24-26 2 胡杨Peu-miR156j和Peu-miR169o成熟体的表达分析 26-34 2.1 材料与方法 26-29 2.1.1 植物材料处理 26 2.1.2 脱水和高盐胁迫处理下胡杨Peu-miR156j和Peu-miR169o的表达分析 26-29 2.1.2.1 CTAB-Tris法提取胡杨总RNA 26-27 2.1.2.2 胡杨Peu-miR156j和Peu-mi169o半定量RT-PCR及实时定量RT-PCR引物设计 27-28 2.1.2.3 胡杨Peu-miR156j和Peu-miR169o成熟体的反转录(RT)反应 28-29 2.1.2.4 胡杨Peu-miR156j和Peu-miR169o的半定量及实时荧光定量PCR反应 29 2.1.2.5 实时荧光定量PCR数据标准化处理 29 2.2 结果与分析 29-33 2.2.1 胡杨Peu-miR156j和Peu-miR169o成熟体的实时荧光定量数据处理 29-32 2.2.2 胡杨成熟体Peu-miR156j和Peu-miR169o成熟体的半定量RT-PCR处理 32-33 2.3 讨论 33-34 3 胡杨PEU-MIR156J和PEU-MIR1690转基因及功能验证 34-59 3.1 胡杨Peu-miR156j和Peu-miR169o的克隆及分析 34-40 3.1.1 材料与方法 34-35 3.1.1.1 植物材料 34 3.1.1.2 仪器和试剂 34 3.1.1.3 培养基及抗生索 34-35 3.1.2 胡杨Peu-miR156j和Peu-miR169o的克隆 35-38 3.1.2.1 胡杨总DNA提取 35 3.1.2.2 PCR扩增 35-36 3.1.2.3 目的片段的回收与纯化 36-37 3.1.2.4 目的片段连入载体 37-38 3.1.2.5 转化 38 3.1.2.6 大肠杆菌单克隆送测 38 3.1.3 胡杨Peu-miR156j和Peu-miR169o基因分析 38 3.1.4 比对与分析 38-40 3.1.4.1 胡杨Peu-miR156j和Peu-miR169o前体DNA序列比对 38-39 3.1.4.2 胡杨Peu-miR156j和Peu-miR169o前体二级结构分析 39-40 3.2 目的基因的酶切与农杆菌转化 40-45 3.2.1 实验材料及试剂 40-41 3.2.2 实验方法 41-45 3.2.2.1 连入酶切位点的目的基因 41-42 3.2.2.2 DNA的回收与纯化 42 3.2.2.3 目的片段与pMD19-T Simple Vector载体连接 42 3.2.2.4 转化大肠杆菌感受态 42 3.2.2.5 大肠杆菌阳性克隆的PCR鉴定 42 3.2.2.6 质粒DNA提收 42-43 3.2.2.7 双酶切及连接体系 43-44 3.2.2.8 转化、PCR检测及质粒提取 44 3.2.2.9 农杆菌感受态细胞的制备及农杆菌转化 44 3.2.2.10 农杆菌菌液PCR检测 44-45 3.2.2.11 农杆菌的活化与培养 45 3.3 胡杨Peu-miR156j和Peu-miR169o基因转化拟南芥 45-49 3.3.1 实验材料 45 3.3.2 拟南芥的播种与管理 45-46 3.3.3 农杆菌介导的拟南芥侵染转化 46-47 3.3.4 转基因植株的筛选与检测 47-49 3.3.4.1 转基因植株的筛选 47 3.3.4.2 转基因拟南芥分子检测 47-48 3.3.4.3 T3代转基因拟南芥植株功能鉴定 48 3.3.4.4 靶基因预测 48 3.3.4.5 靶基因表达分析 48-49 3.4 结果与分析 49-57 3.4.1 胡杨Peu-miRl56j和Peu-miR169o的克隆及载体构建 49-50 3.4.2 T1代转基因拟南芥的分子鉴定 50 3.4.3 35S:MIR156j转基因植株的表型 50-51 3.4.4 35S:MIR156j和35S:MIR169o转基因植株抗盐性检测 51-54 3.4.4.1 35S:MIR156j转基因与野生型拟南芥在盐处理及空MS处理下的萌发率 51-52 3.4.4.2 355:MIR169o转基因与野生型拟南芥在盐处理及空MS处理下的萌发率 52-54 3.4.5 miR156j和miR169o在拟南芥中靶基因的预测及表达分析 54-57 3.4.5.1 miR156j在拟南芥中靶基因的预测及表达分析 54-55 3.4.5.2 miR169o在拟南芥中靶基因的预测及表达分析 55-57 3.5 讨论 57-59 4 结论与展望 59-61 4.1 结论 59-60 4.2 展望 60-61 4.2.1 创新点 60 4.2.2 进一步研究的内容 60-61 参考文献 61-68 个人简介 68 攻读硕士学位期间发表论文 68-69 导师简介 69-70 致谢 70
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中图分类: > 农业科学 > 林业 > 森林树种 > 阔叶乔木 > 杨 > 其他
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