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表达PCV2 Cap蛋白减毒鼠伤寒沙门氏菌活载体疫苗的构建及动物免疫试验
作 者: 赵红妮
导 师: 童德文;许信刚
学 校: 西北农林科技大学
专 业: 基础兽医学
关键词: PCV2 Cap蛋白 减毒鼠伤寒沙门氏菌 活载体疫苗
分类号: S855
类 型: 硕士论文
年 份: 2011年
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内容摘要
本研究目的旨在构建一种表达PCV2 Cap蛋白减毒鼠伤寒沙门氏菌活载体疫苗,通过动物免疫试验对构建的疫苗进行评价。Cap蛋白是PCV2 ORF2基因编码的主要结构蛋白和免疫保护性蛋白,本研究选择截去N端41个氨基酸的核定位区的ORF2编码基因作为目的基因,利用减毒鼠伤寒沙门氏菌的平衡致死系统表达优化的ORF2基因,构建表达Cap蛋白的活载体疫苗,并对重组菌苗的生物学特性和免疫学特性进行评价。研究取得如下结果:1表达猪圆环病毒Cap蛋白的鼠伤寒沙门氏菌活载体疫苗的构建合成特异性引物P1、P2,PCR扩增得到ORF2基因,将其插入经BamH I和Pst I双酶切的Asd+的组成型表达载体pYA3341中,构建重组表达载体pYA3341-ORF2;重组载体电转化入缺失天冬氨酸-β-半醛脱氢酶(Δasd)、腺苷酸环化酶(Δcya)以及环腺苷酸受体蛋白基因(Δcrp)的减毒鼠伤寒沙门氏菌中间宿主菌X3730及终末宿主菌X4550中,获得重组活载体疫苗菌X4550(pYA3341-ORF2)。2重组活载体疫苗菌的生物学特性检测研究重组活载体疫菌苗X4550(pYA3341-ORF2)体外稳定特性、生长特性、口服安全性及在小鼠体内的定值分布情况。结果显示,Cap蛋白能在X4550中有高水平的表达,且重组菌能在体外稳定遗传、生长状态良好、口服安全无毒性及在机体中具有良好的定值分布特性。3重组活载体疫苗菌的免疫原性研究将重组活载体疫苗菌X4550(pYA3341-ORF2)口服免疫Balb/C小鼠作为免疫组,以口服重组菌X4550(pYA3341)的小鼠作为阴性对照组,以口服PBS的小鼠作为空白对照组。ELISA方法检测疫苗免疫组小鼠血清抗体效价达到1:1920;间接免疫荧光法检测疫苗免疫组小鼠血清中和抗体效价可达到1:19.2;MTT法检测免疫组小鼠淋巴细胞分裂指数可达到4.26;流式细胞术检测疫苗免疫组小鼠的CD4+、CD8+T淋巴细胞数目分别约为29.9、7.52,CD4+/CD8+T细胞比值约为3.99。将重组活载体疫苗菌X4550(pYA3341-ORF2)免疫猪,ELISA法检测疫苗免疫猪血清抗体效价1:57.6;疫苗免疫组猪血清的中和抗体效价可达到1:11.2;疫苗免疫组淋巴细胞分裂指数可达到3.82。重组菌苗X4550(pYA3341-ORF2)能够稳定表达Cap蛋白,具有良好免疫原性,为该疫苗的进一步研制与临床应用提供参考依据。
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全文目录
摘要 6-7 ABSTRACT 7-12 文献综述 12-23 第一章 猪圆环病毒Ⅱ型的研究概况 12-23 1.1 猪圆环病毒的病原学与流行病学特征 12-13 1.2 猪圆环病毒Ⅱ 型的分子生物学特征 13-15 1.2.1 基因序列特征 13 1.2.2 PCV2 的主要结构蛋白 13-15 1.3 猪Ⅱ 型圆环病毒的致病机制 15-17 1.3.1 致病机制 15-16 1.3.2 PCV2 的嗜组织特性 16 1.3.3 PCV2 侵袭宿主细胞引起其增殖的特性 16 1.3.4 免疫抑制 16-17 1.3.5 诱发因素 17 1.4 PCV2 综合防治措施 17-18 1.4.1 做好引种检疫 17 1.4.2 强化饲养管理,减少应激 17-18 1.4.3 定期消毒 18 1.4.4 免疫预防 18 1.4.5 药物预防 18 1.5 PMWS 的诊断 18-20 1.5.1 临床诊断 18 1.5.2 PCV2 感染的病理学诊断 18 1.5.3 病原学诊断 18-20 1.6 疫苗的研究进展 20-23 1.6.l 灭活疫苗 20-21 1.6.2 弱毒活疫苗 21 1.6.3 基因工程疫苗 21-23 试验研究 23-61 第二章 表达PCV2 CAP 蛋白重组减毒鼠伤寒沙门氏菌活载体疫苗的构建 23-47 2.1 材料 23-26 2.1.1 毒(菌)株、质粒 23-24 2.1.2 工具酶及主要试剂 24 2.1.3 仪器设备 24 2.1.4 培养基 24-25 2.1.5 溶液的配制 25-26 2.2 方法 26-36 2.2.1 PCR 引物合成 26 2.2.2 PCV2 ORF2 基因的扩增 26 2.2.3 PCR 产物电泳检测及回收 26 2.2.4 克隆载体的构建 26-29 2.2.5 重组表达质粒 pYA3341-ORF2 的构建 29-32 2.2.6 pYA3341-ORF2 重组质粒依次转化减毒鼠伤寒沙门氏菌X3730 和X4550 32-33 2.2.7 重组菌苗X4550(pYA3341-ORF2)表达蛋白的鉴定 33-35 2.2.8 重组菌苗X4550(pYA3341-ORF2)体外特性检测 35-36 2.3 结果及分析 36-42 2.3.1 PCR 扩增目的基因 36 2.3.2 重组克隆质粒pGEM-T-ORF2 的构建和鉴定 36-37 2.3.3 重组表达质粒pYA3341-ORF2 的构建和鉴定 37-38 2.3.4 Cap 蛋白的表达及Western blot 分析 38-39 2.3.5 重组菌苗X4550(pYA3341-ORF2)的体外稳定性 39-40 2.3.6 重组菌苗X4550(pYA3341-ORF2)生长状况分析 40 2.3.7 重组菌苗的安全性试验 40 2.3.8 重组菌苗口服免疫后在小鼠体内的分布和表达 40-42 2.4 讨论 42-46 2.4.1 目的基因的选择 42 2.4.2 选择减毒鼠伤寒沙门氏菌活载体制备口服疫苗的原因 42-43 2.4.3 沙门氏菌的免疫机制 43 2.4.4 表达系统的选择—非抗性的载体-宿主平衡致死系统 43-44 2.4.5 重组疫苗株的稳定性和安全性 44-45 2.4.6 目的蛋白的表达 45 2.4.7 关于重组减毒鼠伤寒沙门氏菌载体疫苗菌株的转化及鉴定 45-46 2.5 小结 46-47 第三章 重组菌苗X4550(PYA3341-ORF2)的动物免疫试验 47-61 3.1 材料 47-48 3.1.1 主要试剂 47 3.1.2 试验器材 47 3.1.3 试验动物 47-48 3.1.4 菌种和质粒 48 3.1.5 溶液的配制 48 3.2 小鼠免疫试验 48-52 3.2.1 重组菌X4550(pYA3341-ORF2)和X4550(pYA3341)的大量制备 48 3.2.2 试验小鼠分组 48-49 3.2.3 试验小鼠免疫 49 3.2.4 免疫小鼠血清的收集 49 3.2.5 免疫小鼠血清抗体效价测定 49-50 3.2.6 免疫小鼠抗体中和活性测定 50-51 3.2.7 MTT 检测重组菌苗免疫小鼠脾的T 淋巴细胞增殖 51-52 3.2.8 免疫小鼠脾脏T 淋巴细胞亚群的测定 52 3.3 猪免疫试验 52-53 3.3.1 重组菌X4550(pYA3341-ORF2)和X4550(pYA3341)的大量制备 52 3.3.2 试验猪分组 52-53 3.3.3 试验猪免疫 53 3.3.4 免疫猪血清的收集 53 3.3.5 免疫猪血清抗体的检测 53 3.4.6 免疫猪血清抗体中和活性检测 53 3.3.7 免疫猪外周血淋巴细胞增殖试验 53 3.4 结果及分析 53-58 3.4.1 免疫小鼠血清抗体效价检测结果 53-54 3.4.2 免疫小鼠血清抗体中和活性检测结果 54 3.4.3 免疫小鼠淋巴细胞增殖试验结果 54-55 3.4.4 免疫小鼠脾脏T 淋巴细胞亚群的测定结果 55-56 3.4.5 免疫猪血清抗体的检测 56-57 3.4.6 免疫猪血清抗体中和活性检测结果 57 3.4.7 免疫猪淋巴细胞转化试验结果 57-58 3.5 讨论 58-60 3.6 小结 60-61 结论 61-62 参考文献 62-70 英文缩略词及中英文对照 70-71 致谢 71-72 作者简介 72
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中图分类: > 农业科学 > 畜牧、动物医学、狩猎、蚕、蜂 > 动物医学(兽医学) > 兽医传染病学
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