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山羊骨髓间充质干细胞生物学特性、冷冻保存及基因转染研究

作 者: 黄荣
导 师: 王锋
学 校: 南京农业大学
专 业: 动物遗传育种与繁殖
关键词: 骨髓间充质干细胞 生物学特性 冷冻保存 基因转染
分类号: S827
类 型: 硕士论文
年 份: 2011年
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内容摘要


骨髓间充质干细胞(Bone marrow mesenchymal stem cells, BMSCs)是一类能高度增殖和自我更新,并具有多向分化潜能的成体干细胞。目前,已在人、小鼠、大鼠、兔、猪、牛和羊等物种进行了研究,证明该类细胞在一定条件下能分化为成骨细胞、软骨细胞、心肌细胞、脂肪细胞、肝细胞、血管内皮细胞、神经细胞和星形胶质细胞等多种成体细胞。另外,研究还发现BMSCs转染效率较高,是一种理想的核移植供体细胞。因此,BMSCs有望成为未来细胞/基因治疗、组织工程的主要种子细胞之一。但是,迄今关于山羊BMSCs分离培养、冷冻保存以及转基因等方面的系统研究报道甚少。因此,本试验利用黄淮山羊为对象,较系统全面地研究了BMSCs的分离培养、生长特性、细胞表面标志、体外诱导分化能力、冷冻保存体系以及基因转染效率等。具体研究内容如下:1.山羊BMSCs的分离培养和生物学特性研究从增殖情况、基因表达和分化潜力三方面对山羊BMSCs的生物学特性进行研究。采用全骨髓贴壁法分离培养原代BMSCs,结果显示山羊BMSCs体外生长状态良好,镜下可见贴壁细胞增殖明显,培养9d即基本汇合,细胞形态均一,大部分呈梭形;传代后,以计数法检测第1代细胞和第7代细胞增殖水平,并绘制生长曲线,曲线呈“s”形,符合细胞生长的一般规律;取第5代细胞接触抑制2d后用流式细胞仪检测细胞周期,结果89.69%的细胞处于G0/G1期,同期化程度较高;通过免疫荧光法和RT-PCR检测,发现山羊BMSCs表达CD29、CD44、CD90、CD106和CD166等表面标志,但是不表达造血干细胞的表面标志CD45;最后,用成骨细胞、脂肪细胞诱导剂成功诱导BMSCs定向分化为成骨细胞和脂肪细胞,鉴定其具有分化能力。2.山羊BMSCs冷冻保存研究从山羊BMSCs冷冻保存时冻存液的种类、浓度和冷冻程序优化其冷冻保存。首先研究冷冻保存对山羊BMSCs生物学特性的影响,结果复苏后细胞的生长曲线依然呈“S”型,同时用流式细胞仪检测接触抑制2d的山羊BMSCs细胞周期,结果显示G0/G1期的细胞达89.45%,与冷冻前比较,差异不明显。然后试验研究了DMSO浓度、蔗糖浓度以及三种冷冻程序对细胞冻存的影响:(1)采用分级冷冻法冷冻细胞,研究含有2.5%、5%和10%DMSO的冻存液对山羊BMSCs冷冻效果的影响,结果,当DMSO含量为2.5%时,复苏后细胞活率为(97.76+1.3)%,显著高于5%和10%试验组,然而三组细胞24 h后的贴壁率差异并不显著;(2)采用分级冷冻法冷冻细胞,在含有10%DMSO的冻存液中,分别添加0.05 M、0.15 M和0.25 M的蔗糖,结果发现这三个试验组复苏后细胞活率差异不显著,另外三组之间24 h贴壁率差异也不显著;(3)采用含有10%DMSO的冻存液,应用三种冷冻程序对山羊BMSCs进行冷冻保存,分别为:分级冷冻法、异丙醇控温盒冷冻法和直接-80℃冷冻法,结果发现直接-80℃冷冻法复苏后细胞活率显著高于其他两组,但是三个试验组24 h贴壁率差异不显著。结果表明,2.5%的DMSO可以满足山羊BMSCs冻存的需要,并且分级冷冻法较适合该细胞的冷冻。3.山羊BMSCs基因转染研究研究山羊BMSCs的基因转染效率。本试验将pEGFP-C1分别转染山羊耳成纤维细胞和山羊BMSCs,进行转染效率比较,结果显示:山羊BMSCs对脂质体LTX较敏感,以敏感细胞的体系进行转染(100μL LDMEM-LG中加入0.25μg质粒、0.5μLPLUSTM Reagents和1.25μL LipofectamineTM LTX),细胞依然呈纤维样且死亡较少,山羊BMSCs转染效率达(67.91±5.3)%,显著高于山羊耳成纤维细胞转染效率(17.79±3.9)%,说明山羊BMSCs是一种转染效率较高的转基因核移植供体细胞。

全文目录


摘要  8-10ABSTRACT  10-12缩略语  12-13第一篇 综述部分  13-41  第一章 BMSCs研究概况  13-25    1 BMSCs的发现和来源  13    2 BMSCs的分离纯化和体外扩增  13-16      2.1 BMSCs分离纯化  13-14      2.2 BMSCs体外扩增  14-16    3 BMSCs的生物学特性  16-17      3.1 形态  16      3.2 细胞周期  16      3.3 表面标志  16-17      3.4 免疫学特性  17      3.5 BMSCs的归巢  17    4 BMSCs多向分化的研究进展  17-20      4.1 向成骨细胞分化  18      4.2 向软骨细胞分化  18      4.3 向脂肪细胞分化  18-19      4.4 向肌肉细胞分化  19      4.5 向心肌细胞分化  19      4.6 向表皮细胞分化  19      4.7 向肌腱分化  19      4.8 向神经细胞分化  19      4.9 向其他细胞分化  19-20    5 BMSCs应用前景和存在问题  20-21    参考文献  21-25  第二章 细胞冻存的研究概况  25-33    1 冷冻保护剂  25-27      1.1 渗透性冷冻保护剂  25-26      1.2 非渗透性冷冻保护剂  26      1.3 抗冻蛋白  26-27      1.4 单一冷冻保护剂  27      1.5 联合冷冻保护剂  27    2 低温保存方法  27-28      2.1 慢速冷冻法  28      2.2 玻璃化冷冻法  28    3 BMSCs的低温保存  28-30      3.1 BMSCs的低温保存现状  29      3.2 BMSCs低温保存面临的问题  29-30    参考文献  30-33  第三章 核移植供体细胞的选择  33-41    1 供体细胞的来源  33-34    2 供体细胞的细胞周期  34-35    3 供体细胞的代数  35    4 供体细胞的年龄  35-36      4.1 来自特定基因表达的影响  35-36      4.2 供体细胞的端粒酶活性  36    5 供体细胞的基因转染效率  36-37    参考文献  37-41第二篇 试验部分  41-73  第四章 山羊BMSCs的分离培养和生物学特性研究  41-53    1 引言  41-42    2 材料与方法  42-45      2.1 试验材料  42      2.2 试验方法  42-45    3 结果与分析  45-49      3.1 山羊BMSCs的分离培养  45-46      3.2 山羊BMSCs的生长曲线  46      3.3 山羊BMSCs的细胞周期  46-47      3.4 山羊BMSCs的鉴定结果  47-49    4 讨论  49-51      4.1 山羊BMSCs的分离方法  49      4.2 BMSCs的表面标志  49      4.3 BMSCs的多向分化潜能  49-51    参考文献  51-53  第五章 山羊BMSCs冷冻保存研究  53-63    1 引言  53    2 材料与方法  53-56      2.1 试验材料  53-54      2.2 试验方法  54-56    3 结果与分析  56-59      3.1 冻存后山羊BMSCs的生长曲线  56-57      3.2 冻存后山羊BMSCs细胞周期  57      3.3 不同浓度DMSO对山羊BMSCs冻存的影响  57-58      3.4 不同浓度蔗糖对山羊BMSCs冻存的影响  58-59      3.5 不同冷冻程序对山羊BMSCs冻存的影响  59    4 讨论  59-61      4.1 冷冻保存后山羊BMSCs的生物学特性  59-60      4.2 冷冻保护剂对山羊BMSCs冷冻效果的影响  60      4.3 冷冻程序对山羊BMSCS冷冻效果的影响  60-61    参考文献  61-63  第六章 山羊BMSCs基因转染研究  63-73    1 引言  63    2 材料与方法  63-67      2.1 试验材料  63-64      2.2 试验方法  64-67    3 结果与分析  67-70      3.1 pEGFP-C1质粒扩增结果  67-68      3.2 pEGFP-C1转染山羊BMSCs结果  68-70    4 讨论  70-72    参考文献  72-73全文结论  73-75发表文章  75-77致谢  77

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中图分类: > 农业科学 > 畜牧、动物医学、狩猎、蚕、蜂 > 家畜 > 山羊
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