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山羊骨髓间充质干细胞生物学特性、冷冻保存及基因转染研究
作 者: 黄荣
导 师: 王锋
学 校: 南京农业大学
专 业: 动物遗传育种与繁殖
关键词: 骨髓间充质干细胞 生物学特性 冷冻保存 基因转染
分类号: S827
类 型: 硕士论文
年 份: 2011年
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内容摘要
骨髓间充质干细胞(Bone marrow mesenchymal stem cells, BMSCs)是一类能高度增殖和自我更新,并具有多向分化潜能的成体干细胞。目前,已在人、小鼠、大鼠、兔、猪、牛和羊等物种进行了研究,证明该类细胞在一定条件下能分化为成骨细胞、软骨细胞、心肌细胞、脂肪细胞、肝细胞、血管内皮细胞、神经细胞和星形胶质细胞等多种成体细胞。另外,研究还发现BMSCs转染效率较高,是一种理想的核移植供体细胞。因此,BMSCs有望成为未来细胞/基因治疗、组织工程的主要种子细胞之一。但是,迄今关于山羊BMSCs分离培养、冷冻保存以及转基因等方面的系统研究报道甚少。因此,本试验利用黄淮山羊为对象,较系统全面地研究了BMSCs的分离培养、生长特性、细胞表面标志、体外诱导分化能力、冷冻保存体系以及基因转染效率等。具体研究内容如下:1.山羊BMSCs的分离培养和生物学特性研究从增殖情况、基因表达和分化潜力三方面对山羊BMSCs的生物学特性进行研究。采用全骨髓贴壁法分离培养原代BMSCs,结果显示山羊BMSCs体外生长状态良好,镜下可见贴壁细胞增殖明显,培养9d即基本汇合,细胞形态均一,大部分呈梭形;传代后,以计数法检测第1代细胞和第7代细胞增殖水平,并绘制生长曲线,曲线呈“s”形,符合细胞生长的一般规律;取第5代细胞接触抑制2d后用流式细胞仪检测细胞周期,结果89.69%的细胞处于G0/G1期,同期化程度较高;通过免疫荧光法和RT-PCR检测,发现山羊BMSCs表达CD29、CD44、CD90、CD106和CD166等表面标志,但是不表达造血干细胞的表面标志CD45;最后,用成骨细胞、脂肪细胞诱导剂成功诱导BMSCs定向分化为成骨细胞和脂肪细胞,鉴定其具有分化能力。2.山羊BMSCs冷冻保存研究从山羊BMSCs冷冻保存时冻存液的种类、浓度和冷冻程序优化其冷冻保存。首先研究冷冻保存对山羊BMSCs生物学特性的影响,结果复苏后细胞的生长曲线依然呈“S”型,同时用流式细胞仪检测接触抑制2d的山羊BMSCs细胞周期,结果显示G0/G1期的细胞达89.45%,与冷冻前比较,差异不明显。然后试验研究了DMSO浓度、蔗糖浓度以及三种冷冻程序对细胞冻存的影响:(1)采用分级冷冻法冷冻细胞,研究含有2.5%、5%和10%DMSO的冻存液对山羊BMSCs冷冻效果的影响,结果,当DMSO含量为2.5%时,复苏后细胞活率为(97.76+1.3)%,显著高于5%和10%试验组,然而三组细胞24 h后的贴壁率差异并不显著;(2)采用分级冷冻法冷冻细胞,在含有10%DMSO的冻存液中,分别添加0.05 M、0.15 M和0.25 M的蔗糖,结果发现这三个试验组复苏后细胞活率差异不显著,另外三组之间24 h贴壁率差异也不显著;(3)采用含有10%DMSO的冻存液,应用三种冷冻程序对山羊BMSCs进行冷冻保存,分别为:分级冷冻法、异丙醇控温盒冷冻法和直接-80℃冷冻法,结果发现直接-80℃冷冻法复苏后细胞活率显著高于其他两组,但是三个试验组24 h贴壁率差异不显著。结果表明,2.5%的DMSO可以满足山羊BMSCs冻存的需要,并且分级冷冻法较适合该细胞的冷冻。3.山羊BMSCs基因转染研究研究山羊BMSCs的基因转染效率。本试验将pEGFP-C1分别转染山羊耳成纤维细胞和山羊BMSCs,进行转染效率比较,结果显示:山羊BMSCs对脂质体LTX较敏感,以敏感细胞的体系进行转染(100μL LDMEM-LG中加入0.25μg质粒、0.5μLPLUSTM Reagents和1.25μL LipofectamineTM LTX),细胞依然呈纤维样且死亡较少,山羊BMSCs转染效率达(67.91±5.3)%,显著高于山羊耳成纤维细胞转染效率(17.79±3.9)%,说明山羊BMSCs是一种转染效率较高的转基因核移植供体细胞。
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全文目录
摘要 8-10ABSTRACT 10-12缩略语 12-13第一篇 综述部分 13-41 第一章 BMSCs研究概况 13-25 1 BMSCs的发现和来源 13 2 BMSCs的分离纯化和体外扩增 13-16 2.1 BMSCs分离纯化 13-14 2.2 BMSCs体外扩增 14-16 3 BMSCs的生物学特性 16-17 3.1 形态 16 3.2 细胞周期 16 3.3 表面标志 16-17 3.4 免疫学特性 17 3.5 BMSCs的归巢 17 4 BMSCs多向分化的研究进展 17-20 4.1 向成骨细胞分化 18 4.2 向软骨细胞分化 18 4.3 向脂肪细胞分化 18-19 4.4 向肌肉细胞分化 19 4.5 向心肌细胞分化 19 4.6 向表皮细胞分化 19 4.7 向肌腱分化 19 4.8 向神经细胞分化 19 4.9 向其他细胞分化 19-20 5 BMSCs应用前景和存在问题 20-21 参考文献 21-25 第二章 细胞冻存的研究概况 25-33 1 冷冻保护剂 25-27 1.1 渗透性冷冻保护剂 25-26 1.2 非渗透性冷冻保护剂 26 1.3 抗冻蛋白 26-27 1.4 单一冷冻保护剂 27 1.5 联合冷冻保护剂 27 2 低温保存方法 27-28 2.1 慢速冷冻法 28 2.2 玻璃化冷冻法 28 3 BMSCs的低温保存 28-30 3.1 BMSCs的低温保存现状 29 3.2 BMSCs低温保存面临的问题 29-30 参考文献 30-33 第三章 核移植供体细胞的选择 33-41 1 供体细胞的来源 33-34 2 供体细胞的细胞周期 34-35 3 供体细胞的代数 35 4 供体细胞的年龄 35-36 4.1 来自特定基因表达的影响 35-36 4.2 供体细胞的端粒酶活性 36 5 供体细胞的基因转染效率 36-37 参考文献 37-41第二篇 试验部分 41-73 第四章 山羊BMSCs的分离培养和生物学特性研究 41-53 1 引言 41-42 2 材料与方法 42-45 2.1 试验材料 42 2.2 试验方法 42-45 3 结果与分析 45-49 3.1 山羊BMSCs的分离培养 45-46 3.2 山羊BMSCs的生长曲线 46 3.3 山羊BMSCs的细胞周期 46-47 3.4 山羊BMSCs的鉴定结果 47-49 4 讨论 49-51 4.1 山羊BMSCs的分离方法 49 4.2 BMSCs的表面标志 49 4.3 BMSCs的多向分化潜能 49-51 参考文献 51-53 第五章 山羊BMSCs冷冻保存研究 53-63 1 引言 53 2 材料与方法 53-56 2.1 试验材料 53-54 2.2 试验方法 54-56 3 结果与分析 56-59 3.1 冻存后山羊BMSCs的生长曲线 56-57 3.2 冻存后山羊BMSCs细胞周期 57 3.3 不同浓度DMSO对山羊BMSCs冻存的影响 57-58 3.4 不同浓度蔗糖对山羊BMSCs冻存的影响 58-59 3.5 不同冷冻程序对山羊BMSCs冻存的影响 59 4 讨论 59-61 4.1 冷冻保存后山羊BMSCs的生物学特性 59-60 4.2 冷冻保护剂对山羊BMSCs冷冻效果的影响 60 4.3 冷冻程序对山羊BMSCS冷冻效果的影响 60-61 参考文献 61-63 第六章 山羊BMSCs基因转染研究 63-73 1 引言 63 2 材料与方法 63-67 2.1 试验材料 63-64 2.2 试验方法 64-67 3 结果与分析 67-70 3.1 pEGFP-C1质粒扩增结果 67-68 3.2 pEGFP-C1转染山羊BMSCs结果 68-70 4 讨论 70-72 参考文献 72-73全文结论 73-75发表文章 75-77致谢 77
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中图分类: > 农业科学 > 畜牧、动物医学、狩猎、蚕、蜂 > 家畜 > 山羊
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