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茶氨酸生物合成:基因工程菌构建及其诱导合成条件
作 者: 朱文娴
导 师: 成浩
学 校: 南京农业大学
专 业: 茶学
关键词: 茶氨酸 γ-谷氨酰转肽酶 谷氨酰胺合成酶 工程菌 催化合成
分类号: S571.1
类 型: 硕士论文
年 份: 2008年
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内容摘要
茶氨酸(Theanine)不仅是茶叶中的特征氨基酸,而且是茶汤特殊风味和鲜爽味的主要成分,是评价高级绿茶的重要标志。同时,大量研究和临床试验表明茶氨酸具有促进大脑功能和神经的生长、抗肿瘤、降压安神等功效。居于以上特点,其制备研究在目前的茶学研究中逐渐成为一个热点。由于从茶叶中提取高纯度的茶氨酸,成本较高;化学合成茶氨酸工艺较复杂;组织培养合成茶氨酸产量低。开展茶氨酸的生物合成研究具有重要的理论意义和实践价值。本论文将生物技术运用到天然产物制备技术中,开展了工程菌构建方面工作。本论文通过基因克隆技术构建了工程菌,优化了工程菌催化合成茶氨酸的条件,从而达到提高茶氨酸产量的目的。主要研究结果如下:1、以培养好的Escherichia coli DH5α(E.coli DH5α)菌液为模板进行PCR反应,将扩增出的γ-谷氨酰转肽酶基因片断和载体pUC19,相连接构建重组质粒pUC19-GGT,将重组质粒pUC19-GGT转化至E.coli DH5α中,构建工程菌。工程菌株经0.1 mM IPTG在32℃诱导后,经酶活性检测,工程菌株每克湿菌体的酶活达到0.236 U/mL左右,约是出发菌株E.coli DH5α的2.6倍。工程菌经32℃培养6 h左右,然后再加IPTG至0.1mM于32℃诱导表达4 h收集菌体。1mL反应体系(含0.35ML-谷氨酰胺、2.0 M盐酸乙胺、70 mg/mL菌体、pH 9.5)于30℃培养4h,茶氨酸的最大生成量为0.475g/L左右。2、以培养好的荧光假单胞的菌液为模板进行PCR反应,将扩增出的谷氨酰胺合成酶基因片断和载体pET32a,相连接构建重组质粒pET-GS,将重组质粒pET-GS转化至E.coli BL21中,构建工程菌。工程菌株经0.1 mM IPTG在28℃诱导后,经酶活性检测,工程菌株湿菌体的酶活达到41.70 U/mgprot左右,约是出发菌株E.coli BL21的126.5倍。3、本实验优化了工程菌pET-GS催化合成茶氨酸的反应条件,工程菌经32℃培养6 h左右,然后再加IPTG至0.1mM于28℃诱导表达4h收集菌体。1 mL反应体系(L-谷氨酸钠0.2 M,盐酸乙胺1.2 M,咪唑100 mM,MnCl25 mM,ATP 30 mM,菌体100 mg/mL,pH 9.5),200 rpm,于30℃培养14 h,茶氨酸的最大生成量为6.2 g/L左右。
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全文目录
英文缩略表 9-10 摘要 10-11 ABSTRACT 11-13 第一章 绪论 13-20 1.1 茶氨酸 13-16 1.1.1 茶氨酸研究的历史与现状 13-14 1.1.2 茶氨酸的制备 14-16 1.1.3 茶氨酸分析测定及提取纯化 16 1.1.4 茶氨酸的发展前景 16 1.2 γ-谷氨酰转肽酶 16-18 1.2.1 γ-谷氨酰转肽酶的分布 16-17 1.2.2 γ-谷氨酰转肽酶的制备 17 1.2.3 γ-谷氨酰转肽酶的催化反应 17 1.2.4 γ-谷氨酰转肽酶活性的测定 17-18 1.2.5 γ-谷氨酰转肽酶的应用及发展前景 18 1.3 谷氨酰胺合成酶 18-20 1.3.1 谷氨酰胺合成酶的分布 18-19 1.3.2 谷氨酰胺合成酶的催化反应 19 1.3.3 谷氨酰胺合成酶的应用价值 19-20 第二章 实验设计方案 20-23 2.1 实验目的 20 2.2 实验主要内容 20 2.3 技术路线 20-23 2.3.1 γ-谷氨酰转肽酶基因的克隆与表达 20-21 2.3.2 谷氨酰胺合成酶基因的克隆与表达 21-22 2.3.3 工程菌pET-GS催化合成茶氨酸反应条件的优化 22-23 第三章 大肠杆菌DH5A中的谷氨酰转肽酶基因的克隆 23-36 3.1 材料与方法 23-26 3.2 实验方法 26-30 3.2.1 引物的设计与合成 26 3.2.2 以菌液为模板进行PCR扩增 26-27 3.2.3 PCR产物的回收 27 3.2.4 目的片段和载体双酶切并进行产物回收及纯化 27-28 3.2.5 连接反应 28 3.2.6 DH5a感受态细胞的制备 28-29 3.2.7 连接产物转化感受态细胞 29 3.2.8 碱法小批量抽提质粒DNA[46] 29-30 3.2.9 核酸电泳 30 3.2.10 重组质粒pUG-GGT的双酶切验证 30 3.2.11 基因序列测定 30 3.3 结果与分析 30-35 3.3.1 谷氨酰转肽酶基因的PCR扩增 30-31 3.3.2 重组质粒pUC19-GGT的构建 31-32 3.3.3 重组质粒pUC19-GGT双酶切验证 32 3.3.4 序列测定 32-35 3.4 小结 35-36 第四章 Γ-谷氨酰转肽酶的诱导表达研究 36-43 4.1 材料和试剂 36 4.2 实验方法 36-38 4.2.1 工程菌生长曲线制作方法 36-37 4.2.2 不同诱导温度优化 37 4.2.3 不同养菌温度优化 37 4.2.4 不同诱导剂浓度优化 37-38 4.2.5 酶活检测 38 4.2.6 茶氨酸合成测定 38 4.3 结果与分析 38-41 4.3.1 工程菌生长曲线的制作 38-39 4.3.2 诱导温度优化结果 39 4.3.3 养菌温度优化结果 39-40 4.3.4 诱导剂浓度优化结果 40 4.3.5 酶活测定 40 4.3.6 茶氨酸合成测定 40-41 4.4 小结 41-43 第五章 荧光假单胞菌中的谷氨酰胺合成酶基因的克隆 43-53 5.1 材料与方法 43 5.2 实验方法 43-47 5.2.1 溶菌酶法抽提基因组 43-44 5.2.2 引物的设计与合成 44 5.2.3 以菌液为摸板进行PCR扩增及产物回收 44-45 5.2.4 目的片断和载体双酶切 45 5.2.5 连接反应 45-46 5.2.6 BL21感受态细胞的制备 46 5.2.7 连接产物转化感受态细胞 46 5.2.8 重组质粒pET-GS的双酶切验证 46 5.2.9 重组质粒pET-GS的PCR验证 46-47 5.2.10 基因序列测定 47 5.3 结果与分析 47-52 5.3.1 荧光假单胞菌基因组的抽提 47 5.3.2 谷氨酰胺合成酶基因的PCR扩增 47-48 5.3.3 重组质粒pET-GS的构建 48 5.3.4 重组质粒pET-GS的双酶切验证 48-49 5.3.5 基因序列测定 49-52 5.4 小结 52-53 第六章 谷氨酰胺合成酶的诱导表达研究 53-60 6.1 材料和试剂 53-54 6.2 实验方法 54-56 6.2.1 工程菌生长曲线制作方法 54 6.2.2 表达产物SDS-PAGE分析 54 6.2.3 GS试剂盒测定GS转移酶活性 54-55 6.2.4 不同诱导剂浓度优化 55 6.2.5 不同养菌温度优化 55 6.2.6 不同诱导温度优化 55 6.2.7 酶活性检测 55-56 6.3 结果与分析 56-59 6.3.1 工程菌生长曲线制作 56 6.3.2 表达产物SDS-PAGE分析结果 56-57 6.3.3 不同诱导剂浓度优化结果 57-58 6.3.4 不同养菌温度优化实验结果 58 6.3.5 不同诱导温度优化实验结果 58-59 6.3.6 酶活性检测 59 6.4 小结 59-60 第七章 工程菌催化合成茶氨酸反应条件的优化 60-66 7.1 材料和试剂 60 7.2 实验方法 60-61 7.2.1 茶氨酸合成测定 60 7.2.2 pH对茶氨酸合成的影响 60 7.2.3 ATP浓度对茶氨酸合成的影响 60-61 7.2.4 缓冲液对茶氨酸合成的影响 61 7.2.5 底物浓度对茶氨酸合成的影响 61 7.2.6 反应时间对茶氨酸合成的影响 61 7.2.7 对照实验 61 7.3 实验结果 61-65 7.3.1 pH对茶氨酸合成的影响 61-62 7.3.2 ATP浓度对合成茶氨酸的影响 62 7.3.3 咪唑作为缓冲液的确定 62-63 7.3.4 底物浓度对合成茶氨酸的影响 63-64 7.3.5 反应时间对合成茶氨酸的影响 64-65 7.4 小结 65-66 第八章 讨论与总结 66-68 参考文献 68-72 致谢 72-73 攻读硕士学位期间发表论文情况 73
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中图分类: > 农业科学 > 农作物 > 经济作物 > 饮料作物 > 茶
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