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猪瘟病毒影响RANTES产生分子机制的研究

作 者: 吴学宝
导 师: 肖少波
学 校: 华中农业大学
专 业: 预防兽医学
关键词: 猪瘟病毒 Npro RANTES
分类号: S852.65
类 型: 硕士论文
年 份: 2010年
下 载: 76次
引 用: 1次
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内容摘要


猪瘟(Classical Swine Fever, CSF)又称猪霍乱(Hog Cholera,HC),是由猪瘟病毒(CSFV)引起的猪的一种急性热性致死性疾病,给世界养猪业造成了巨大的经济损失。近几年猪瘟的免疫失败、猪瘟与其它疫病的混合感染及继发感染不断出现,使疫病的防控形式日趋严峻。深入研究CSFV感染细胞后的免疫反应及其分子机制进一步阐明猪瘟病毒的免疫机理,对猪瘟新型疫苗研制和防控措施制定具有十分重要的意义。调节活化正常T细胞表达与分泌的因子(Regulated upon Activation, Normal T cell Expressed and Secreted, RANTES)是趋化因子CC家族的重要因子之一,也是一种多效性的趋化因子。它不仅对多种细胞有趋化作用,还可以激活淋巴细胞,参与炎症反应的发生,调节细胞的生长和分化。目前的研究已经证实:RANTES在包括细菌、病毒在内的多种微生物的感染与致病中扮演十分重要的角色,但迄今为止猪瘟病毒感染与RANTES表达之间的关系尚不清楚。鉴于此,本研究开展了猪瘟病毒感染后RANTES的表达动力学研究,并探讨了猪瘟病毒调控RANTES表达的信号通路。主要研究内容如下:1、CSFV感染PK-15细胞后RANTES mRNA表达的动力学采用荧光定量Real-time PCR分析了CSFV感染PK-15细胞后不同时间RANTES的表达,发现CSFV感染PK-15细胞后早期RANTES mRNA的表达水平没有明显的变化,但感染后72h显著低于未感染细胞,而且CSFV感染能显著抑制poly(I:C)诱导的RANTES表达。为了进一步验证荧光定量PCR的结果,随后构建了猪RANTES基因启动子荧光素酶报告系统,发现CSFV能抑制RANTES启动子的激活。2、CSFV Npro参与抑制RANTES表达为了确定猪瘟病毒编码的蛋白在抑制RANTES中的作用,分别构建了猪瘟病毒12种编码蛋白的真核表达表达质粒,采用RANTES启动子荧光素酶报告系统分析不同编码对RANTES启动子活性的影响,发现转染Npro的表达质粒能显著抑制RANTES启动子的活性。进一步对RANTES启动子中不同转录因子结合位点进行突变分析,发现ISRE结合位点在CSFV Npro抑制RANTES中起重要作用。为了确定Npro抑制RANTES的必需区域,构建了Npro的一系列突变体,发现Npro的N端21个氨基酸对抑制RANTES的表达是非必需的,而突变与Npro切割活性有关的第69位及第112、136位氨基酸后可以完全或部分消除Npro对RANTES表达的抑制,提示Npro的切割活性在抑制RANTES中扮演重要角色。3、CSFV Npro抑制RANTES表达的信号通路研究为了进一步揭示CSFV Npro是否抑制RANTES产生的上游信号通路,分别利用RIG-Ⅰ、MDA5、IPS-1、IRF3、IRF7等激活RANTES信号通路的信号分子和转录因子进行分析,发现Npro可以抑制RIG-Ⅰ、MDA5、IPS-1、IRF3、IRF7超表达诱导的RANTES,表明Npro通过抑制RIG-I/MDA5信号通路,从而抑制RANTES的表达。

全文目录


摘要  6-8
ABSTRACT  8-10
缩略语表(Abbreviation)  10-12
第1章 文献综述  12-17
  1.1 CSFV基因组的结构  12-13
  1.2. N~(pro)蛋白  13
  1.3 RANTES概述  13-14
    1.3.1 化学结构  13
    1.3.2 作用机制  13-14
    1.3.4 功能研究  14
  1.4 调控RANTES的信号转导途径  14-17
    1.4.1 丝裂原激活蛋白激酶(MAPKs)通路  15
    1.4.2 NF-κB途径  15
    1.4.3 JAK-STAT途径  15
    1.4.4 PKC途径  15-16
    1.4.5 磷脂酰肌醇3-激酶(p13-K)途径  16
    1.4.6 CD28通路  16-17
第2章 研究目的与意义  17-18
第3章 材料与方法  18-28
  3.1 试验材料  18-20
    3.1.1 毒株、细胞与菌株  18
    3.1.2 载体与质粒  18-19
    3.1.3 工具酶及主要试剂  19
    3.1.4 培养基与抗生素及其配制  19
    3.1.5 主要缓冲液与相关试剂及其配制  19-20
  3.2 试验方法  20-28
    3.2.1 CSFV的增殖  20
    3.2.2 细胞基因组的提取  20
    3.2.3 限制性内切酶酶切反应  20
    3.2.4 PCR产物或酶切产物的电泳检测  20-21
    3.2.5 PCR产物或酶切产物回收与纯化  21
    3.2.6 外源DNA片段与质粒载体的连接反应  21-22
    3.2.7 大肠杆菌感受态细胞的制备(氯化钙法)  22
    3.2.8 连接产物的转化  22
    3.2.9 质粒的制备与鉴定  22-24
    3.2.10 脂质体介导转染法  24-25
    3.2.11 CSFV感染后细胞上清中病毒的50%组织细胞感染量(TCID_(50))的检测  25
    3.2.12 实时荧光定量PCR检测感染CSFV的PK-15细胞中RANTES相对表达水平  25-26
    3.2.13 荧光素酶报告基因的检测  26
    3.2.14 重叠延伸PCR基本操作流程及示意图  26-28
第4章 结果与分析  28-45
  4.1 CSFV感染PK-15细胞后RANTES mRNA表达的动力学  28-31
    4.1.1 CSFV感染力(TCID_(50))的测定  28-29
    4.1.2 RT-PCR检测CSFV抑制poly(I:C)诱导RANTES  29-30
    4.1.3 猪RANTES启动子荧光素酶报告系统的建立  30
    4.1.4 CSFV能抑制poly(I:C)诱导的RANTES  30-31
  4.2 CSFV N~(pro)参与抑制RANTES表达  31-42
    4.2.1 RT-PCR扩增CSFV的各cDNA片段  31-34
    4.2.2 CSFV各蛋白cDNA片段酶切  34-35
    4.2.3 CSFV抑制poly(I:C)诱导的RANTES与N~(pro)有关  35
    4.2.4 猪RANTES启动子突变体的构建  35-38
    4.2.5 N~(pro)抑制RANTES与RANTES启动子区域ISRE结合位点有关  38-40
    4.2.6 N~(pro)N端21位氨基酸对于抑制poly(I:C)诱导的RANTES不是必需的  40-41
    4.2.7 N~(pro)抑制poly(I:C)诱导的RANTES的与其切割活性有关  41-42
  4.3 CSFV感染抑制RANTES表达信号通路的研究  42-45
5 讨论与结论  45-49
  5.1 讨论  45-48
    5.1.1 猪RANTES启动子荧光素酶报告系统的构建  45
    5.1.2 CSFV N~(pro)抑制poly(I:C)诱导的RANTES  45-46
    5.1.3 RIG-I/MADA5参与N~(pro)抑制poly(I:C)诱导的RANTES  46-48
  5.2 结论  48-49
参考文献  49-57
致谢  57-58
附录  58

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中图分类: > 农业科学 > 畜牧、动物医学、狩猎、蚕、蜂 > 动物医学(兽医学) > 兽医基础科学 > 家畜微生物学(兽医病原微生物学) > 家畜病毒学
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