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坦布苏病毒的分离鉴定及重组腺病毒介导shRNA抑制坦布苏病毒在体外复制的研究

作 者: 唐熠
导 师: 刁有祥
学 校: 山东农业大学
专 业: 预防兽医学
关键词: 坦布苏病毒 全基因组 感染宿主 分离鉴定 RNA干扰 腺病毒载体
分类号: S858.32
类 型: 博士论文
年 份: 2013年
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内容摘要


坦布苏病毒(Tembusu virus,TMUV)是导致肉鸭神经症状及产蛋鸭出血性卵巢炎(duck hemorrhagic ovaritis,DHO)的主要病原,主要引起20日龄以内的雏鸭出现严重的神经症状,死淘率增高及产蛋鸭的产蛋大幅下降。发病雏鸭通常表现为采食量下降,腹泻,共济失调,瘫痪等症状。发病蛋鸭体温升高;四肢无力、瘫痪;食欲废绝;发病后不久开始产蛋大幅下降;发病后期排草绿色稀便,气味恶臭,出现神经症状。剖检可见卵泡破裂出血,卵黄性腹膜炎,脾脏出血,胰腺出血坏死,肝脏肿大、出血。TMUV属于黄病毒科黄病毒属蚊媒病毒类的恩塔亚病毒群,是一种具有包膜的单股正链RNA病毒,通过节肢动物的叮咬进行传播而导致宿主发病。病毒的基因组全长约为11kb,包含5’和3’的非编码区,仅含有一个开放阅读框(Open reading frame,ORF),编码3种结构蛋白和8种非结构蛋白。其中包膜蛋白(Envelop protein,E)蛋白是病毒的主要结构蛋白,与病毒的吸附,融合,注入,血凝性及宿主范围和细胞嗜性有密切关系;NS5蛋白为TMUV分子量最大的蛋白,也是最保守的蛋白,它具有RNA依赖的RNA聚合酶活性,与病毒基因组的复制密切相关。在本研究中我们利用建立的多种TMUV核酸检测方法应来确定TMUV感染的宿主范围,以阐明该疾病的流行特点。并利用腺病毒介导shRNA技术靶向干扰E基因和NS5基因,探索TMUV防治的新策略,为我国有效防治该病奠定基础。1. TMUV的半套式RT-PCR检测方法的建立根据与TMUV同源性较高的Bagaza病毒的NS3基因的保守序列设计了3条引物,建立了一种适用于TMUV检测的半套式RT-PCR快速检测方法。采用该方法对TMUV山东分离株进行检测。结果显示,半套式RT-PCR对两株分离株均能扩增出277bp的特异性条带,而对照病原:鸭瘟病毒、禽流感病毒(H9亚型)、新城疫病毒、传染性法氏囊病病毒、减蛋综合症病毒、扩增结果均为阴性;敏感性试验结果显示第一轮扩增的敏感度1×105copies/μL,第二轮扩增的敏感度为1×102copies/μL,第二次扩增的敏感性比第一次高103倍;该方法对山东省各地采集的24份疑似病料的检测出率可达87.5%。表明本试验所建立的套式PCR方法可用于TMUV感染的临床诊断和流行病学调查。2. TMUV的RT-LAMP检测方法的建立及四种核酸检测方的比较根据TMUV的NS5基因的保守序列设计一套引物,建立了一种适用于TMUV的逆转录环介导等温扩增快速检测方法。该方法检测的敏感性可达1×101拷贝/μL;对3株TMUV山东分离株的检测均为阳性,而对鸭瘟病毒、禽流感病毒(H9亚型)、新城疫病毒、传染性法氏囊病病毒、减蛋综合征病毒、扩增结果均为阴性;应用该方法对山东省各地采集的76份疑似病料可检出68份阳性。表明本试验所建立的环介导等温扩增检测方法简便、快速、灵敏、特异性高,可用于TMUV感染的临床诊断和流行病学调查。利用针对TMUV的NS5基因建立的RT-PCR,半套式RT-PCR,荧光定量RT-PCR及RT-LAMP四种检测方法对系列稀释的质粒DNA以及TMUV基因组RNA进行检测,评价4种检测方法的检测敏感度。结果显示四种检测方法的质粒检测敏感度分别为2×104拷贝/μL,20拷贝/μL,2拷贝/μL和20拷贝/μL,基因组RNA的检测敏感度分别为100pg,100fg,10fg和100fg。在针对采自疑似TMUV感染的鸭场的69份泄殖腔棉拭子的检测中,四种检测方法的检出率分别为38/69(55.1%),52/69(75.4%),57/69(82.6%)和55/69(79.7%)。综上所述,四中核酸检测方法中RT-LAMP以其在敏感度,特异性及检测时间等方面的优势,作为TMUV检测中的首选检测方法。3.不同宿主来源的TMUV的分离鉴定为研究TMUV的自然感染宿主范围及流行特点,我们从山东省各地采集麻雀样品68份,蚊子样品35组,蛋鸡样品73份,蛋鸭样品132份和雏鸭样品112份,应用建立的半套式RT-PCR进行TMUV的检测,并对阳性样品进行分离鉴定。结果显示5种样品的检出率分别为66%(45/68),60%(21/35),33%(24/73),62%(82/132)和69%(77/112)。对每类样品选取一株分离株进行NS5基因的序列分析,结果5株分离株的NS5基因同源性高达99.5%以上。代表毒株TMUV-SDHS与经典毒株YY5,BYD的相应基因的同源性在99%以上,与TMUV国外分离株的同源性在87%-91%之间。攻毒试验显示TMUV-SDHS及TMUV-SDMS可以引起55周龄的樱桃谷鸭种鸭发病且临床症状与剖检变化与自然感染病例一致。以上结果表明山东省TMUV感染现象已经十分普遍;山东省不同宿主来源的TMUV分离毒株为同一种病毒;TMUV不仅可以感染产蛋鸭及雏鸭也可以感染蛋鸡和麻雀,但无明显症状;麻雀及蚊子可携带TMUV并与TMUV在自然界中的传播有着密切的关系;麻雀携带TMUV与该病毒在冬季仍然流行有着密切关系。4.TMUV山东分离株全基因序列的测定及分析从山东潍坊发生产蛋下降的鸭群中分离到一株TMUV(SD1001),应用RT-PCR及RACE技术对该分离株的全基因序列进行测定并对获得的序列进行分析。结果显示该TMUV分离株为单股正链RNA病毒,基因组全长10990nt,仅含有一个独立的开放阅读框(Open reading frame,ORF),编码3410个氨基酸。基因组两端分别为5’和3’非编码区,长度分别为142nt和618nt。病毒基因组共编码11种蛋白,其中3种结构蛋白,8种非结构蛋白。通过将各编码蛋白的氨基酸序列与JEV、WNV、YFV、DEN2V、BAGV、TBEV的相应序列进行比较,结果TMUV与BAGV的氨基酸同源性最高(81.4%),与TBEV的同源性最低(41.8%)。同时TUMV的非编码区序列与BAGV具有高度的一致性,包含多个保守区域(conserved sequences, CS),CS序列为RCS3-CS3-RCS2-CS2-CS1。以上研究结果为研究病毒宿主特点及组织嗜性提供了有力的数据支持。5.腺病毒介导shRNA在体内外抑制TMUV复制研究.RNA干扰(RNA interference, RNAi),又称RNA沉默,是指双链RNA特异性诱导mRNA降解的过程,是一种转录后基因表达沉默(post transcripitional gene silence,PTGS)现象。近年来RNAi在疾病治疗领域展现出极大的潜力,特别是抗病毒治疗等方面。(1)靶向干扰TMUV E基因和NS5基因shRNA序列的筛选本研究针对TMUV的E和NS5基因分别设计构建了三个特异性shRNA(short hairpinRNAs)表达载体pSilencer-E1、 pSilencer-E2、 pSilencer-E3及pSilencer-NS51、pSilencer-NS52、pSilencer-NS53。用RT-PCR扩增TMUV的E、NS5部分基因,纯化后将二者分别克隆到pEGFP-N1载体中,构建荧光报告重组质粒pEGFP-E和pEGFP-NS5。干扰载体和目的基因报告载体共转染293T细胞后的检测结果表明,6个干扰载体均不同程度的干扰了目的基因的表达,其中pSilencer-E1及pSilencer-NS52的抑制效果最佳,分别为75.8%和68.7%。将六种的shRNA表达载体分别转染293T细胞,转染24h后接种TMUV病毒,接种后48h应用相对定量荧光RT-PCR上述试验中病毒RNA的相对数量。结果显示两种干扰载体都能有效干扰病毒在细胞中的复制,抑制效率分别为74%及86%,因此选择pSilencer-NS52用于进一步研究。(2)干扰TMUV复制的重组腺病毒的构建与鉴定表达shRNA-NS52的腺病毒载体的构建采用AdMax载体系统,将shRNA-NS52表达盒从pSilencer-NS52转移到腺病毒穿梭载体pDC312上,构建重组穿梭载体pDC312-NS52。将腺病毒骨架质粒pBHGloxΔE1与pDC312-NS52穿梭质粒按1:3比例共转染HEK293细胞,进行同源重组,成功产生重组腺病毒pAd-NS52并通过HEK293细胞多次扩增后测定重组病毒滴度分别为2.1×109PFU/ml.(3)重组腺病毒介导的shRNA抑制TMUV在HEK293细胞中复制的研究为评价重组腺病毒pAd-NS52对TMUV的体外干扰效果。将重组病毒pAd-NS52接种HEK293细胞,24h后再接种TMUV病毒,继续培养48h后用相对荧光定量RT-PCR检测TMUV。结果显示pAd-NS52可以显著抑制TMUV在HEK293细胞中的复制。试验中发现pAd-NS52的抑制效果与感染剂量有关,当感染剂量500个MOI时,抑制效果为88%。

全文目录


符号说明  6-11
中文摘要  11-15
ABSTRACT  15-20
1 引言  20-41
  1.1 坦布苏病毒病概述  20-21
  1.2 TMUV 的生物学特性  21-30
    1.2.1 TMUV 的分类地位  21
    1.2.2 黄病毒的形态结构  21-22
    1.2.3 黄病毒的基因组及编码蛋白  22-26
    1.2.4 黄病毒的复制机制  26-27
    1.2.5 黄病毒基因组末端倒置互补序列  27-28
    1.2.6 TMUV 的研究进展  28-30
  1.3 RNAi 研究进展  30-36
    1.3.1 RNAi 概念  30-31
    1.3.2 RNAi 在抗病毒治疗中的应用  31-35
    1.3.3 黄病毒 RNAi 研究进展  35-36
  1.4 腺病毒载体研究进展  36-39
  1.5 研究的目的意义  39-41
2 材料与方法  41-73
  2.1 材料  41-44
    2.1.1 病毒株及抗体  41
    2.1.2 实验动物及细胞  41
    2.1.3 主要试剂、试剂盒及化学药品  41-42
    2.1.4 试剂的配制  42
    2.1.5 载体  42-43
    2.1.6 主要仪器设备  43-44
  2.2 试验方法  44-73
    2.2.1 TMUV 半套式 RT-PCR 检测方法的建立与应用  44-49
    2.2.2 TMUV RT-LAMP 检测方法的建立与应用  49-52
    2.2.3 TMUV 多种核酸检测方法的比较  52-54
    2.2.4 不同宿主来源的 TMUV 的分离与鉴定  54-57
    2.2.5 TMUV 山东分离株 SD1001 全基因序列测定  57-63
    2.2.6 靶向干扰 TMUV E 基因和 NS5 基因的 shRNA 序列的筛选  63-71
    2.2.7 干扰 TMUV 复制的重组腺病毒的构建与鉴定及体外干扰试验  71-73
3 结果  73-96
  3.1 TMUV 半套式 RT-PCR 检测方法的建立与应用  73-74
    3.1.1 半套式 RT-PCR 检测方法的特异性试验结果  73
    3.1.2 半套式 RT-PCR 检测方法的敏感性  73-74
    3.1.3 半套式 RT-PCR 对 TMUV 临床样品的检测结果  74
  3.2 TMUV RT-LAMP 检测方法的建立与应用  74-76
    3.2.1 TMUV RT-LAMP 检测方法的敏感性试验结果  74
    3.2.2 TMUV RT-LAMP 检测方法的特异性试验结果  74-75
    3.2.3 临床样品检测结果  75-76
  3.3 TMUV 多种核酸检测方法的比较  76-79
    3.3.1 多种检测方法的敏感性试验结果  76
    3.3.2 多种检测方法的特异性试验结果  76-78
    3.3.3 临床样品检测结果  78-79
  3.4 不同宿主来源的 TMUV 的分离与鉴定  79-84
    3.4.1 不同宿主来源的 TMUV 流行病学调查  79
    3.4.2 麻雀分离株 TMUV-SDHS 鸭胚培养特性  79-80
    3.4.3 麻雀分离株 TMUV-SDHS 细胞培养特性  80-81
    3.4.4 蚊源分离株 TMUV-SDHS 细胞培养特性  81-83
    3.4.5 TMUV-SDHS 的 E 基因和 NS5 基因的遗传进化分析结果  83
    3.4.6 TMUV-SDHS 及 TMUV-SDMS 株对产蛋鸭致病性研究结果  83-84
  3.5 TMUV 山东分离株 SD1001 全基因序列测定  84-88
    3.5.1 TMUV 基因组分析结果  84-85
    3.5.2 TMUV 病毒的蛋白的氨基酸比对结果  85-86
    3.5.3 TMUV 5’末端和 3’末端非编码区的分析  86-87
    3.5.4 TMUV 病毒的蛋白的潜在糖基化位点预测  87
    3.5.5 TMUV 开放阅读框 Bootscan 扫描  87-88
  3.6 靶向干扰 TMUV E 基因和 NS5 基因的 shRNA 序列的筛选  88-94
    3.6.1 重组载体 pEGFP-E 及 pEGFP-NS5 载体的测序鉴定  88
    3.6.2 转染用细胞的选择  88
    3.6.3 荧光标签载体转染 293T 细胞  88-90
    3.6.4 shRNA 干扰 E-GFP 和 NS5-GFP 融合蛋白的表达  90-91
    3.6.5 shRNA 干扰载体与 GFP 融合蛋白的表达载体共转染后的流式细胞检测  91-93
    3.6.7 E 基因和 NS5 基因的相对荧光定量检测结果  93-94
  3.7 干扰 TMUV 复制的重组腺病毒的构建与鉴定及体外干扰试验  94-96
    3.7.1 重组腺病毒的包装出毒  94
    3.7.2 重组腺病毒的鉴定  94-95
    3.7.3 重组腺病毒滴度的测定  95
    3.7.4 重组腺病毒介导的 shRNA 体外干扰 TMUV 复制的研究  95-96
4 讨论  96-102
  4.1 TMUV 核酸检测方法的建立及多种核酸检测方法的比较  96-98
    4.1.1 TMUV 半套式 RT-PCR 检测方法的建立与应用  96
    4.1.2 TMUV RT-LAMP 检测方法的建立与应用  96
    4.1.3 TMUV 多种核酸检测方法的比较  96-98
  4.2 不同宿主来源的 TMUV 的分离与鉴定  98-99
  4.3 TMUV 山东分离株 SD1001 全基因序列测定  99-100
  4.4 重组腺病毒介导的 shRNA 干扰 TMUV 复制的研究  100-102
5 结论  102-103
参考文献  103-114
附录  114-116
致谢  116-117
博士在读期间发表论文  117-118

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